GB 5009.24-2010 食品安全国家标准 食品中黄曲霉毒素M(下标1)和B(下标1)的测定.pdf

1、 中华人民共和国国家标准GB 5009.242010食品安全国家标准 食品中黄曲霉毒素 M1和 B1的测定 National food safety standard Determination of aflatoxins M1and B1in foods 中华人民共和国卫生部发布 2010-03-26 发布 2010-06-01 实施 GB 5009.242010 I 前 言 本标准代替 GB/T 5009.24-2003食品中黄曲霉毒素 M1与 B1的测定方法 。 本标准所代替的历次版本发布情况为： GB/T 5009.24-1985、 GB/T 5009.24-1996、 GB/T 50

2、09.24-2003。 GB 5009.242010 1 食品安全国家标准 食品中黄曲霉毒素 M1和 B1的测定 1 范围 本标准规定了牛乳及其制品、奶油及新鲜猪组织（肝、肾、血及瘦肉）等食品中黄曲霉毒素 M1与B1的测定方法。 本标准适用于牛乳及其制品、奶油及新鲜猪组织（肝、肾、血及瘦肉）等食品中黄曲霉毒素 M1与B1的测定。 2 原理 样品经提取、浓缩、薄层分离后，黄曲霉毒素 M1与 B1在紫外光（波长 365nm）下产生蓝紫色荧光，根据其在薄层上显示荧光的最低检出量来测定含量。 3 试剂和材料 3.1 甲醇：分析纯。 3.2 石油醚：分析纯。 3.3 三氯甲烷：分析纯。 3.4 无水硫酸

3、钠：分析纯。 3.5 异丙醇：分析纯。 3.6 硅胶 G：层析用。 3.7 氯化钠及氯化钠溶液（ 40 g/L） 。 3.8 硫酸（ 1+3） 。 3.9 玻璃砂：用酸处理后洗净干燥，约相当 20 目。 3.10 黄曲霉毒素 M1标准溶液：用三氯甲烷配制成每毫升相当于 10g 的黄曲霉毒素 M1标准溶液。以三氯甲烷作空白试剂，黄曲霉毒素 M1的紫外最大吸收峰的波长应接近 357 nm，摩尔消光系数为 19 950。避光，置于 4 冰箱中保存。 3.11 黄曲霉毒素 M1与 B1混合标准使用液：用三氯甲烷配制成每毫升相当于各含 0.04 g 黄曲霉毒素M1与 B1。避光，置于 4冰箱中保存。 4

4、 仪器和设备 4.1 10 目圆孔筛。 4.2 小型粉碎机。 GB 5009.242010 2 4.3 玻璃板： 5 cm20 cm。 4.4 展开槽: 长 25 cm，宽 6 cm，高 4 cm。 4.5 紫外光灯： 100 W 125 W，带 365 nm 滤光片。 4.6 微量注射器。 5 分析步骤 整个操作需在暗室条件下进行。 5.1 样品提取 5.1.1 样品提取制备表，见表 1。 表 1 试样制备 样品名称 称样量 / （ g） 加水量 / （ mL） 加甲醇量 /（ mL） 提取液量/（ mL） 加 40g/L氯化钠溶液量 / （ mL） 浓缩体积 / （ mL） 滴加体积 /

5、（ L） 方法灵敏度 / （ g/kg） 牛乳 30 0 90 62 25 0.4 100 0.1 炼乳 30 0 90 52 35 0.4 50 0.2 牛乳粉 15 20 90 59 28 0.4 40 0.5 乳酪 15 5 90 56 31 0.4 40 0.5 奶油 10 45 55 80 0 0.4 40 0.5 猪肝 30 0 90 59 28 0.4 50 0.2 猪肾 30 0 90 61 26 0.4 50 0.2 猪瘦肉 30 0 90 58 29 0.4 50 0.2 猪血 30 0 90 61 26 0.4 50 0.2 提取液量按式（ 1）计算： )90(158BA

6、X += （ 1） 式中： X提取液量，单位为毫升（ mL） ； A试样中的水分量，单位为毫升（ mL） （牛乳、炼乳及猪组织的取样量为 30g，牛乳粉、乳酪的取样量为 15g） ； B加水量，单位为毫升（ mL)； 注： 样品中的水分量参照食物成分表 。 因各提取液中含 48 mL 甲醇，需 39 mL 水才能调到甲醇与水之体积比为( 55+45)，因此加入氯化钠溶液( 40 g/L) 量等于( 87 mL)减去提取液量（ mL） 。 5.1.2 乳与炼乳：称取 30.00 g 混匀的样品，置于小烧杯中，再分别用 90 mL 甲醇移于 300mL 具塞锥形瓶中，盖严防漏。振荡 30 min，

7、用折叠式快速滤纸滤于 100 mL 具塞量筒中。按表 1 收集 62 mL 乳与52 mL 炼乳（各相当于 16 g 样品）提取液。 5.1.3 乳粉：取 15.00 g 样品，置于具塞锥形瓶中，加入 20 mL 水，使样品湿润后再加入 90 mL 甲醇，以下按 5.1.3 自“振荡 30 min”起，依法操作，按表 1 收集 59 mL 提取液（相当于 8 g 样品） 。 5.1.4 干酪：称取 15.00 g 切细、过 10 目圆孔筛混匀样品，置于具塞锥形瓶中，加 5 mL 水和 90 mL甲醇，以下按 5.1.3 自“振荡 30 min”起依法操作，按表 1 收集 56 mL 提取液（相

8、当于 8 g 样品） 。 5.1.5 奶油：称取 10.00 g 样品，置于小烧杯中，用 40 mL 石油醚将奶油溶解并移于具塞锥形瓶中。加 45 mL 水和 55 mL 甲醇，振荡 30 min 后，将全部液体移于分液漏斗中。再加入 1.5 g 氯化钠摇动溶GB 5009.242010 3 解，待分层后，按上表收集 80 mL 提取液（相当于 8 g 样品）于具塞量筒中。 5.1.6 新鲜猪组织：取新鲜或冷冻保存的猪组织样品（包括肝、肾、血、瘦肉）先切细，混匀后称取30.00 g，置于小乳钵中，加玻璃砂少许磨细，新鲜全血用打碎机打匀，或用玻璃珠振摇抗凝。混匀后称取 30.00 g， 将各样品

9、置于 300 mL 具塞锥形瓶中， 加入 90 mL 甲醇， 以下按 5.1.3 自“振荡 30 min”起依法操作。按上表收集 59 mL 猪肝， 61 mL 猪肾， 58 mL 猪瘦肉及 61 mL 猪血等提取液（各相当于16 g 样品） 。 5.2 净化 5.2.1 用石油醚分配净化：将以上收集的提取液移入 250 mL 分液漏斗中，再按各种食品加入一定体积的氯化钠溶液（ 40 g/L） （见表 1） 。再加入 40 mL 石油醚，振摇 2 min，待分层后，将下层甲醇 -氯化钠水层移于原量筒中，将上层石油醚溶液从分液漏斗上口倒出，弃去。再将量筒中溶液转移于原分液漏斗中。再重复用石油醚提

10、取两次，每次 30 mL，最后将量筒中溶液仍移于分液漏斗中。奶油样液总共用石油醚提取两次，每次 40 mL。 5.2.2 用三氯甲烷分配提取：于原量筒中加入 20 mL 三氯甲烷，摇匀后，再倒入原分液漏斗中，振摇2 min。待分层后，将下层三氯甲烷移于原量筒中，再重复用三氯甲烷提取两次，每次 10 mL 合并于原量筒中。弃去上层甲醇水溶液。 5.2.3 用水洗三氯甲烷层与浓缩制备：将合并后的三氯甲烷层倒回原分液漏斗中，加入 30 mL 氯化钠溶液（ 40 g/L） ，振摇 30 s，静置。待上层混浊液有部分澄清时，即可将下层三氯甲烷层收集于原量筒中。加入 10 g 无水硫酸钠，振摇放置澄清后，

11、将此液经装有少许无水硫酸钠的定量慢速滤纸过滤于 100 mL蒸发皿中。氯化钠水层用 10 mL 三氯甲烷提取一次，并经过滤器一并滤于蒸发皿中。最后将无水硫酸钠也一起倒于滤纸上，用少量三氯甲烷洗量筒与无水硫酸钠，也一并滤于蒸发皿中，于 65 水浴上通风挥干，用三氯甲烷将蒸发皿中残留物转移于浓缩管中，蒸发皿中残渣太多，则经滤纸滤入浓缩管中。于 65 用减压吹气法将此液浓缩至 0.4 mL 以下，再用少量三氯甲烷洗管壁后，浓缩定量至 0.4 mL 备用。 5.3 测定 5.3.1 硅胶 G 薄层板的制备 薄层板厚度为 0.3 mm， 105 活化 2 h，在干燥器内可保存 1d 2d。 5.3.2

12、点板 取薄层板（ 5 cm20 cm）两块，距板下端 3 cm 的基线上各滴加两点，在距第一与第二板的左边缘0.8 cm 1 cm 处各滴加 10 L 黄曲霉毒素 M1与 B1混合标准使用液，在距各板左边缘 2.8 cm 3 cm 处各滴加同一样液点（各种食品的滴加体积见表 1） ，在第二板的第 2 点上再滴加 10 L 黄曲霉毒素 M1与B1混合标准使用液。一般可将薄层板放在盛有干燥硅胶的层析槽内进行滴加，边加边用冷风机冷风吹干。 5.3.3 展开 5.3.3.1 横展：在槽内加入 15 mL 事先用无水硫酸钠脱水的无水乙醚（每 500 mL 无水乙醚中加 20 g无水硫酸钠） 。将薄层板靠

13、近标准点的长边置于槽内，展至板端后，取出挥干，再同上继续展开一次。 5.3.3.2 纵展：将横展两次挥干后的薄层板再用异丙醇 -丙酮 -苯 -正己烷 -石油醚（沸程 60 90 ）-三氯甲烷（ 5+10+10+10+10+55）混合展开剂纵展至前沿距原点距离为 10 cm 12 cm 取出挥干。 5.3.3.3 横展：将纵展挥干后的板再用乙醚横展 1 次 2 次，展开方法同 5.3.3.1。 5.3.4 观察与评定结果 5.3.4.1 在紫外光灯下将第一、二板相互比较观察，若第二板的第二点在黄曲霉毒素 M1与 B1标准点的相应处出现最低检出量（ M1与 B1的比移值依次为 0.25 和 0.4

14、3） ，而在第一板相同位置上未出现荧光GB 5009.242010 4 点，则样品中黄曲霉毒素 M1与 B1含量在其所定的方法灵敏度以下（见表 1） 。 5.3.4.2 如果第一板的相同位置上出现黄曲霉毒素 M1与 B1的荧光点，则第二板第二点的样液点是否各与滴加的标准点重叠，如果重叠，再进行以下的定量与确证试验。 5.3.5 稀释定量 样液中的黄曲霉毒素 M1与 B1荧光点的荧光强度与黄曲霉毒素 M1与 B1的最低检出量（ 0.0004 g）的荧光强度一致，则乳、炼乳、乳粉、干酪与奶油样品中黄曲霉毒素 M1 与 B1的含量依次为 0.1 g/kg、0.2 g/kg、 0.5 g/kg、 0.

15、5 g/kg 及 0.5 g/kg；新鲜猪组织（肝、肾、血、瘦肉）样品均为 0.2 g/kg（见表 1） 。如样液中黄曲霉毒素 M1与 B1的荧光强度比最低检出量强，则根据其强度逐一进行测定，估计减少滴加微升数或经稀释后再滴加不同微升数， 直至样液点的荧光强度与最低检出量点的荧光强度一致为止。 5.3.6 确证试验 在做完定性或定量的薄层板上，将要确证的黄曲霉毒素 M1和 B1的点用大头针圈出。喷以硫酸溶液( 1+3)，放置 5 min 后，在紫外光灯下观察，若样液中黄曲霉毒素 M1和 B1点与标准点一样均变为黄色荧光，则进一步确证检出的荧光点是黄曲霉毒素 M1和 B1。 6 分析结果的表述 黄曲霉毒素 M1或 B1的含量按式（ 2）进行计算。 mDVVX10000004.021= （ 2） 式中： X黄曲霉毒素 M1或 B1含量，单位为微克每千克（ g/kg） ； V1样液浓缩后体积，单位为毫升 (mL)； V2出现最低荧光样液的滴加体积，单位为毫升 (mL)； D浓缩样液的总稀释倍数； m浓缩样液中所相当的试样质量，单位为克 (g)； 0.0004黄曲霉毒素 M1或 B1的最低检出量，单位为微克（ g） 。