ImageVerifierCode 换一换
格式:PDF , 页数:12 ,大小:292.03KB ,
资源ID:257634      下载积分:5000 积分
快捷下载
登录下载
邮箱/手机:
温馨提示:
如需开发票,请勿充值!快捷下载时,用户名和密码都是您填写的邮箱或者手机号,方便查询和重复下载(系统自动生成)。
如填写123,账号就是123,密码也是123。
特别说明:
请自助下载,系统不会自动发送文件的哦; 如果您已付费,想二次下载,请登录后访问:我的下载记录
支付方式: 支付宝扫码支付 微信扫码支付   
注意:如需开发票,请勿充值!
验证码:   换一换

加入VIP,免费下载
 

温馨提示:由于个人手机设置不同,如果发现不能下载,请复制以下地址【http://www.mydoc123.com/d-257634.html】到电脑端继续下载(重复下载不扣费)。

已注册用户请登录:
账号:
密码:
验证码:   换一换
  忘记密码?
三方登录: 微信登录  

下载须知

1: 本站所有资源如无特殊说明,都需要本地电脑安装OFFICE2007和PDF阅读器。
2: 试题试卷类文档,如果标题没有明确说明有答案则都视为没有答案,请知晓。
3: 文件的所有权益归上传用户所有。
4. 未经权益所有人同意不得将文件中的内容挪作商业或盈利用途。
5. 本站仅提供交流平台,并不能对任何下载内容负责。
6. 下载文件中如有侵权或不适当内容,请与我们联系,我们立即纠正。
7. 本站不保证下载资源的准确性、安全性和完整性, 同时也不承担用户因使用这些下载资源对自己和他人造成任何形式的伤害或损失。

版权提示 | 免责声明

本文(GB T 27517-2011 鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR方法.pdf)为本站会员(tireattitude366)主动上传,麦多课文库仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对上载内容本身不做任何修改或编辑。 若此文所含内容侵犯了您的版权或隐私,请立即通知麦多课文库(发送邮件至master@mydoc123.com或直接QQ联系客服),我们立即给予删除!

GB T 27517-2011 鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR方法.pdf

1、ICS 11. 220 B 41 道B中华人民圭七和国国家标准GB/T 27517一2011鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR方法A multiplex RT-PCR method to differentiate the highly pathogenic and classical porcine reproductive and respiratory syndrome virus 2011-11-21发布2012-03-01实施飞辈革轨币。中华人民共和国国家质量监督检验检菠总局中国国家标准化管理委员会发布中华人民共和国国家标准鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性

2、与经典毒株复合RT-PCR方法GB/T 27517-2011 陪中国标准出版社出版发行北京市朝阳区和平里西街甲2号(100013)北京市西城区三里河北街16号(100045)网址总编室:(010)64275323发行中心:(010)51780235读者服务部:(010)68523946中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷各地新华书店经销* 开本880X 1230 1/16 印张O.75 字数17千字2012年2月第一版2012年2月第一次印刷导书号:155066. 1-41035定价16.00元如有印装差错由本社发行中心调换版权专有侵权必究举报电话:(010)68510107剧吕本标准按照GB/T1

3、. 1-2009给出的规则起草。本标准由中华人民共和国农业部提出。本标准由全国动物防疫标准化技术委员会(SAC/TC181)归口。本标准起草单位z河南省动物疫病预防控制中心。G/T 27517-2011 本标准主要起草人z吴志明、同若潜、张志凌、张健、荆汝顶、刘光辉、赵明军、曹杰伟、钱勇、程俊贞、赵雪丽、张盼。I 1 范围鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR方法GB/T 27517-2011 本标准规定了检测以基因组非结构蛋白Nsp2编码区缺失30个氨基酸为特征的猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性毒株与非缺失30个氨基酸的猪繁殖与呼吸综合征病毒经典毒株复合RT-PCR鉴别诊

4、断方法。本标准适用于疑似猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)感染猪血清及临床病料等样品中的病毒核酸检测。2 试剂和仪器设备除另有规定外,所用生化试剂均为分析纯。提取RNA所用试剂均应使用无RNA酶的容器进行分装。2. 1 试剂2. 1. 1 拭子悬液(见附录A),组织悬液(见附录A),以上试剂常温保存。2. 1.2 阿氏液(见附录A),裂解液(TriZol), 1 X T AE核酸电泳缓冲液(见附录A),氯仿,0.01mol/L (pH7.2)的PBS(见附录A),DEPC处理水(见附录A),以上试剂4.C保存。2. 1.3 异丙醇,75%乙醇,DNA分子量标准,6X电泳上样缓冲液,以上试剂2

5、0.C保存。2. 1.4 阳性对照、阴性对照(见附录A)。2. 1.5 复合RT-PCR扩增用上、下游引物序列参见附录B。2. 1.6 鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR反应体系组成、说明及使用注意事项参见附录C。2.2 仪器设备PCR扩增仪,高速冷冻离心机(离心力在12OOOg以上),核酸电泳仪和水平电泳槽,恒温水浴锅,2 .C8 .C冰箱,一20.C冰箱,单道微量移液器(0.5L10L;2L20L;20L200L;100L1 000L),组织匀浆器或研钵,凝胶成像系统(或紫外透射仪),真空干燥器(非必备)。3 样品的采集、处理、存放及运输3. 1 样晶采集及处理过

6、程的注意事项采样过程中样本不得交叉污染,采样及样品处理过程中应戴一次性手套、口罩、帽子。3.2 样品的采集及处理3.2. 1 拭子样品3.2. 1. 1 鼻腔拭子:采样时要将棉拭子深入鼻腔来回刮35次,取鼻腔分泌物。GB/T 27517-2011 3.2.1.2 胚门拭子:将棉拭子深入胆门转一圈沽取粪便。3.2.1.3 将鼻腔拭子和胆门拭子一起放入盛有1.0mL拭子悬液的Eppendorf管中,然后将拭子悬液转入元菌Eppendorf管中,4.C条件下5000 r/min离心10min,取上清转入新的元菌Eppendorf管中,编号备用。3.2.2 组织样品组织样品采集时应采取有明显病变的淋巴

7、结、扁桃体、肺脏、脾脏、肾脏、胸腺等组织样品。用无菌的剪刀和慑子剪取待检样品0.5g左右于组织匀浆器或研钵中充分匀浆或研磨,再加O.3 mLO. 5 mL PBS混匀,然后将组织悬液转入元菌Eppendorf管中,4.C条件下5000 r/min离心10min,取上清转人新的无菌Eppendorf管中,编号备用。3.2.3 血清或抗凝血用元菌注射器自耳静脉或前腔静脉采集血液3mL5 mL,待血清析出后直接吸取至无菌Eppendorf管中,编号备用;用元菌注射器先吸入抗凝剂(阿氏液)2mL3 mL,再自耳静脉或前腔静脉采集等量血液,快速混匀后转人无菌Eppendorf管中,编号备用。3.3 存藏

8、与运送采集或处理的样品在2.C8 .C条件下保存应不超过24h;若需长期保存,应放置一70.C冰箱,但应避免反复冻融。采集的样品密封后,采用保温壶或保温桶加冰密封,尽快运送到实验室。4 操作方法4. 1 样品RNA的制备4. 1. 1 取1.5 mL灭菌Eppendorf管,每管加入300L裂解液,然后分别加入待测样品、阴性对照样品、阳性对照样品各100L,吸头反复吸打混匀(一份样品换用一个吸头);再加入100L氯仿,充分颠倒混匀(不宜过于强烈).于4C条件下,12000 r/min离心15min。4. 1. 2 吸取离心后各管中的上清液150L转移至新的1.5 mL灭菌Eppendorf管中

9、(注意不要吸出中间层),加入150L20c预冷的异丙醇,颠倒混匀,室温放置15min. 4. 1. 3 4.C条件下12000 r/min离心15minCEppendorf管开口保持朝离心机转轴方向放置)。轻轻倒去上清,倒置于吸水纸上,吸干液体,不同样品应置于吸水纸不同地方沾干。加入1mL 75%乙醇,轻轻颠倒洗涤。4. 1. 4 4.C条件下12000 r/min离心5minCEppendorf管开口保持朝离心机转轴方向放置)。轻轻倒去上清液,倒置于吸水纸上,吸干液体,不同样品应在吸水纸不同地方吸干。4. 1.5 4.C条件下12000 r/min离心30s,将管壁上的残余液体甩到管底部,用

10、微量加样器尽量将其吸干,一份样本换用一个吸头,吸头不要碰到有沉淀一面,真空抽干3min5 min或室温干燥10min. 不宜过于干燥,以免RNA不易溶解。4. 1. 6 加入11LDEPC处理水,轻轻渥匀,溶解管壁上的RNA,2000 r/min离心5s,冰上保存备用。提取的RNA应在2h内进行RT-PCR扩增或放置于一70.C冰箱备用。4.2 反转录CcDNA的合成)配制反转录反应体系(参见附录。,向每管中加入4.1.6中相应RNA10L,37 .C水浴1h或置于PCR仪中37.C 1 h,反应结束后,70.C15min灭活反转录酶,直接用于下面的PCR扩增或一20.C 冻存备用。2 GB/

11、T 27517-2011 4.3 复合PCR扩增配制复合PCR反应体系(参见附录。,在室温下融化后,瞬时离心使液体全部聚集在管底部,向每管中加入4.2中相应cDNA4L,经充分混匀后瞬时离心使液体全部聚集于管底,加入25L的石蜡油覆盖液面(若PCR仪具有热盖加热功能时PCR反应管中也可不加石蜡油,但推荐采用加石蜡泊的方法)。PCR扩增条件:95.C预变性5min后,94C45 s ,59.C 45 s ,72.C 45 s共35个循环,最后72C延伸10min.扩增反应结束后取出放置于4.C。4.4 PCR扩增产物的电泳检测称取1.2g琼脂糖加入100mL核酸电泳缓冲液中加热,充分溶化后稍放凉

12、,加入适量的滇化乙链(终浓度o.5g/mL) ,倒入肢槽制备凝胶板。在电泳槽中加入lXTAE核酸电泳缓冲液,使液面刚刚没过凝胶。取5L10LPCR扩增产物分别和1L2L6X电泳上样缓冲液?昆合后,分别加样到各凝胶孔,取5LDNA分子量标准加到一凝胶孔中。5V/cm恒压下电泳30min左右。将电泳好的凝胶放到紫外透射仪或凝胶成像系统上观察结果,进行判定并做好试验记录。5 结果判定5. 1 试验蜡果成立条件猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株阳性对照的PCR扩增产物,经电泳后分别在400bp 和264bp位置出现特异性条带,同时阴性对照的PCR扩增产物电泳后没有任何条带(参见附录D),则试验结

13、果成立;否则结果不成立。5.2 阳性判定在试验结果成立的前提下,如果样品的PCR产物电泳后在400bp和264坷的位置上同时出现特异性条带,判定为猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株核酸检测双阳性;若400bp位置出现特异条带而264bp位置元特异条带,判定为猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性毒株核酸检测阳性E若264 bp位置出现特异条带而400bp位置无特异条带,判定为猪繁殖与呼吸综合征病毒经典毒株核酸检测阳性。5.3 阴性判定在试验结果成立的前提下,如果400bp和264bp位置均未出现特异性条带,判定为猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株核酸检测阴性。3 GB/T 27517-20

14、11 A.1 拭子悬液附录A(规范性附录)试剂的配制在0.01mol/L PBS液中添加以上所有的抗生素,浓度提高5倍;加入抗生素后调pH值至7.27. 4。A.2 组织悬液在0.01mol/L PBS液中添加青霉素(2000 IU/mL),链霉素(2mg/mL)、庆大霉素(50pg/mL)和制霉菌素(1000 IU/mL)。A.3 阿氏液葡萄糖2.05g,拧朦酸铀0.8g,拧棱酸0.055g,氯化铀0.42g,加蒸馆水至100mL,溶解后调pH值至6.1,69kPa 15 min高压灭菌,4.C保存备用。A.41XTAE核酸电泳缓冲渡Tris碱,24.2白冰乙酸,5.71mL;O. 5 mo

15、l/L EDTA(pH8. 0) ,10 mL;加蒸馆水至100mL,使用时用蒸馆水作50倍稀释,即为1XTAE核酸电泳缓冲液。A.5 0.01 mol/L(pH7.2)的磷酸盐缓冲液(PBS)A.5.1 A液(0.2mol/L磷酸二氢铀水溶液):NaH2P04 H20 27.6 g,先用适量蒸锢水溶解,最后用蒸馆水稀释至1000 mLo A.5.2 B液(0.2mol/L磷酸氢二铀水溶被):Na2HP047H2053.6 g,(或Na2HP04 12H20 71. 6 g或Na2HP04 2H20 35.6 g)先用适量蒸馆水溶解,最后用蒸锢水稀释至1000 mLo A. 5. 3 0.01

16、 mol/L PBS的配制:A液14mL,B液36mL,加氧化铀(NaCl)8.5 g,最后用蒸悟水稀释至1000 mL; 121 .C , 15 min高压灭菌,4.C保存备用。A.6 DEPC处理水用0.1%DEPC处理后的蒸馆水,经121.C 15 min高压处理,用于溶解RNA。A.7 阳性对照经Marc-145细胞传代培养的第8代PRRSV高致病性和经典毒株灭活细胞毒。A.8 阴性对照Marc-145细胞液。4 GB/T 27517-2011 附录B(资料性附录)鉴别猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR方法所用引物表B.1鉴别猪繁殖与呼服综合征病毒高致病性与经典毒

17、株复合RT-PCR方法所用引物引物名称引物浓度寻|物序列扩增片段大小PCR扩增上游引物Pl20 pmol/L S-GGTTCGGAAGAAACTGTCGG-3 Pl/P3引物对扩增片段PCR扩增上游引物P220 pmol/L S-AGCAGGTGGAAGAAGCGAATC-3 400 bp; P2/P3引物对扩增片段PCR扩增共用下游引物P320 pmol/L S-GAGCTGAGTATTTTGGGCGTG-3 264 bp 5 GB/T 27517-2011 附录C(资料性附录)鉴别猪繁殖与呼眼综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR反应体系组成、说明及使用时注意事项C.1 试剂盒组成表

18、C.1试剂盒组成组成成分数量反转录反应体系20管(10L/管)PCR反应体系20管(21L/管阳性对照500L 阴性对照500L 裂解液6.5 mL 氯仿2.5 mL 异丙薛4 mL 75%乙靡15 mL DEPC处理水2 mL 50倍TAE电泳缓冲液40 mL 漠化乙键溶液40L 上样缓冲液120L 石蜡泊1. 5 mL C.2 兑明C. 2.1 反转录反应体系成分:M-ML V 5 X Reaction buffer C含Mg2+),4L;2.5 mmol/L dNTPs , 4L;M-MLV,0.5 p.L;RNA酶抑制剂,0.5L;共用反转录引物CP3,也是复合PCR共用下游引物)1L

19、;总体积10L。C. 2. 2 复合PCR反应体系成分:10XPCR缓冲液(含Mg2+), 2. 5L;2.5 mmol/L dNTPs,2L;凹,0.5L;P2,0.5L;P3,1L;ExTaq DNA聚合酶,0.5LC2.5U);灭菌双蒸水,14.0L;总体积为21L。C. 2. 3 裂解液的主要成分是TriZol,为RNA提取试剂,外观为粉红色,于4.C保存。C. 2. 4 反转录反应体系中含猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株共用反转录引物、反转录酶及各种离子。C. 2. 5 PCR反应体系中含猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株特异性引物对、ExTaq酶及各种离子。6 C.3

20、 使用时的注意事项C. 3.1 由于阳性样品中模板浓度相对较高,注意检测过程中不得交叉污染。C. 3. 2 注意防止试剂盒组分受污染。试剂盒之间的成分勿混用。GB/T 27517-2011 C. 3. 3 请按照说明书要求分别在4.C、-20.C保存不同的试剂,试剂盒有效期为6个月。使用时在室温下融化,暂放置于冰上,使用后立即放回。C. 3. 4 反转录反应体系与PCR反应体系应避免反复冻融,在使用前应瞬时离心,以保证反应液集中在管底。-FON|hFmhNH阁。GB/T 27517-2011 附录(资料性附录)猪繁殖与呼眼综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR产物电泳图D 4 M 3 2 400 bp 264 bp M一-DNA分子量标准(DL2000Marker); 1一一-PRRSV高致病性和经典毒株混合物阳性对照;2-PRRSV高致病性毒株阳性对照;3-PRRSV经典毒株阳性对照;4 阴性对照。猪繁殖与呼吸综合征病毒高致病性与经典毒株复合RT-PCR产物电泳图圄D.1侵权必究书号:155066 1-44035 定价: 版权专有16.00元GB/T 27517-2011 打印H期:2012年2月22H F002A

copyright@ 2008-2019 麦多课文库(www.mydoc123.com)网站版权所有
备案/许可证编号:苏ICP备17064731号-1