DB33 T 2110.3-2018 实验动物 长爪沙鼠 第3部分：遗传质量控制.pdf

1、ICS 65.020.30 B 44 DB33 浙江省地方标准 DB33/T 2110.3 2018 实验动物 长爪沙鼠 第 3 部分：遗传质量控制 Laboratory animal Mongolian gerbil Part 3： Genetic quality control 2018 - 04 - 12 发布 2018 - 05 - 12 实施 浙江省质量技术监督局 发布 DB33/T 2110.3 2018 I 前 言 实验动物 长爪沙鼠分为七个部分： 第 1部分：微生物控制等级及监测； 第 2部分：寄生虫控制等级及监测； 第 3部分：遗传质量控制； 第 4部分：组织病理检查规程；

2、第 5部分：配合饲料营养成分； 第 6部分：环境及设施； 第 7部分：饲养管理规程。 本部分为实验动物 长爪沙鼠的第 3部分。 本部分由 浙江省科技厅 提出 并归口 。 本部分起草单位：浙江省医学科学院、杭州师范大学 。 本部分的主要起草人：褚晓峰、戴方伟、宋晓明、李长龙、陈振文、李巍、卢领群、应华忠、萨晓婴 本部分为首次发布。 DB33/T 2110.3 2018 1 实验动物 长爪沙鼠 第 3部分：遗传质量控制 1 范围 本部分规定了封闭群长爪沙鼠（ Mongolian gerbil）的繁殖方法和遗传质量要求。 本部分适用于长爪沙鼠的遗传分类、繁育和遗传质量控制。 2 术语和定义 下列术语

3、和定义适用于本文件。 2.1 长爪沙鼠 Mongolian gerbil （ Meriones unguieulataus） 经人工饲育，对其携带的病原微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚，用于科学研究、教学、生产和检定以及其他科学实验的长爪沙鼠。 2.2 封闭群（远交群） closed colony or outbred stock 以非近亲交配方式进行繁殖生产的长爪沙鼠种群，在不从外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖4 代以上称为封闭群，亦称远交群。 3 封闭群（远交群）命名 封闭群 种群名称 由 2 个 4 个大写英文字母命名 。 种群名称前标明保持者的英文缩写名称，第一个字

4、母应大写，后面的字母小写，一般不超过 4 个字母。保持者与种群名称之间用冒号分开。 示例 1： Z： ZCLA表示由浙江省医学科学院（ Z）保持的 ZCLA长爪沙鼠封闭群。 4 封闭群长爪沙鼠的繁殖方法 4.1 封闭群 长爪沙鼠的繁殖原则 尽量保持封闭群长爪沙鼠的遗传概貌和生理特征，避免近交系数随繁殖代数增加而过快上升。 4.2 引种 4.2.1 作为繁殖用原种的长爪沙鼠应遗传背景明确，来源清楚，有较完整的资料（包括种群名称、来源、遗传基因特点及主要生物学特性等）。 DB33/T 2110.3 2018 2 4.2.2 长爪沙鼠的引种数量要求：在保证每代近交系数增量不大于 1%的前提下，决定引

5、种群规模，引种数目参照 GB 14923 执行。采用循环交配方式时，最小引种群规模为 25 对无血缘关系（三代以内无共同祖先）的雌雄长爪沙鼠。 4.3 繁殖 封闭群应足够大，并尽量避免近亲交配。可根据封闭群的大小，选择采用 循环交配或随机交配进行繁殖。具体繁殖方法参照 GB 14923执行。 5 封闭群长爪沙鼠的遗传质量监测 5.1 封闭群长爪沙鼠的遗传质量标准 封闭群长爪沙鼠应符合以下要求： a) 具有明确的遗传背景资料，来源清楚，有完整的资料（包括种群名称、来源、遗传基因特点及主要生物学特性等），并能充分表明新培育的或引种的封闭群长爪沙鼠符合封闭群定义的规定。 b) 用于封闭群保种及生产的

6、繁殖记录卡应清楚完整，繁殖方法科学合理。 c) 经遗传检测（微卫星 DNA标记或生化标记基因检测方法等）质量合格。 5.2 封闭群长爪沙鼠遗传质量检测方法及实施 5.2.1 采样 按表 1要求 从每个封闭群中随机抽取非同窝成年长爪沙鼠，雌雄各半，采样数量按表 1进行。随机采取长爪沙鼠的血液或其他组织。血液样本不少于 1 毫升 /只，其他等组织样本不少于 0.5 克。 表 1 遗传检测采样要求 群体数量（单性别种鼠数量） 采样数量 少于 100 只 15 只 100 只及以上 30 只 5.2.2 检测方法 采用微卫星 DNA标记或生化标记基因检测方法进行。具体方法按附录 A和附录 B进行。 5

7、.2.3 结果判断 群体内遗传变异采用平均杂合度指标或群体平衡状态方法进行评价。 当用杂合度来判定时 ,平均杂合度在 0.5 0.7的群体，判定为合格的 封闭群群体。当用是否达到平衡状态来判定时，按照哈代 -温伯格（ Hardy-Weiberg）定律，根据各位点的等位基因数计算封闭群的基因频率，进行 2检验。如果没有达到平衡状态，说明群体的基因频率或基因型频率发生变化，该封闭群群体判为不合格。 5.2.4 检测时间间隔 封闭群长爪沙鼠生产群每年至少进行一次遗传质量检测。 5.2.5 结论与报告 根据判定结果对被检测的封闭群长爪沙鼠群体做出检测报告。 DB33/T 2110.3 2018 3 附

8、 录 A （规范性附录） 封闭群长爪沙鼠的微卫星标记检测方法 A.1 仪器设备 PCR仪，遗传分析仪， 4 冰箱， -20 冰箱，低温高速离心机，水浴锅， 感量为 0.0001 g的分析天平， pH计，紫外分光光度仪。 A.2 基因组 DNA的提取 用酚 -氯仿萃取法或试剂盒提取基因组 DNA。 A.3 微卫星位点 用 28 个分布于长爪沙鼠染色体上的微卫星位点检测封闭群长爪沙鼠的遗传概貌。各微卫星位点的名称、引物序列、等位基因数、 PCR反应的 Tm值及等位基因分布范围见表 A.1。 表 A.1 长爪沙鼠各微卫星位点的引物序列、最佳扩增条件、等位基因数及等位基因分布范围 位点 引物序列 (5

9、 -3) 镁离子浓度 (mmol/L) 退火温度 () 等位基因 数 等位基因 范围 AF200942 CAGGCACCCCCAGTTT GTCTACACAGGCTGAGGATGT 2.0 54 15 180-215 AF200943 GGCTCCTGATTCTACATTTCT CAACCATTGGCAACTCTC 2.0 57 17 154-181 AF200944 GCTGGGCTTTAATGTTTATTT GGTGGCTCACACTTTCTGT 2.0 54 19 113-134 AF200946 TTTCTGGGGTCTCTTTCTCTC CCATTCTGCAAGACTCCTCT 2.

10、0 57 28 195-242 AF200945 AGTCCCTATTACATCCACAAG TTATCCTGCAAAGCCTAAG 2.0 57 12 166-186 AF200941 TGGGTCCTTTGGAAGA TGGCTTAAAATGAATCACTTA 2.0 55 24 115-153 AF200947 GACAGAGTGGGAGGGGTATGT TGGCAAGTTTGGTTTGTTTGA 2.0 55 17 188-212 D16Mit7 CTGCCACCCCTGAACCATTA CTACAAGATGTGGGGCATGA 2.0 52.6 15 480-529 D16Mit26

11、 CAGGAATAAAGTATAATGGGGTGC CCCATGATCAGTTGGGTTTT 2.0 49.1 9 207-266 D1Mit362 TGTGTGACTGCTTGGAAGATG CTGAGTCCCTAAAGTTGTCCTTG 1.5 50.0 16 476-504 DB33/T 2110.3 2018 4 表 A.1 长爪沙鼠各微卫星位点的引物序列、最佳扩增条件、等位基因数及等位基因分布范围 （续 ） 位点 引物序列 (5 -3) 镁离子浓度(mmol/L) 退火温度 () 等位基因数 等位基因范围 D8Mit184 GTTTTTCTCAGAAGAATGCAATATACC TG

12、AGAAGAATGAGGAATTTGTCC 2.0 48.1 11 196-229 D7Mit33 TCTGAAGTTTGAATGGTTGTGG TTTCAAAATCGTGTCATTTTGC 2.0 47.3 15 376-394 D6Mit37 AAAGAATTGCACATCCACTGG TGCCCAGGATGTTTAAGAGG 2.0 47.0 14 246-265 D5Mit31 TCAGGGCTCTCTAAGGGACA ACTATGCAGCCACCAAATCC 2.0 53.1 9 318-350 D12Mit201 CCACTGGATGGCAACAGAC TATGTGTTTCAAAA

13、CCACACTCG 2.0 53.1 18 245-283 D2Mit22 GCTCCCTTTCCTCTTGAACC GGGCCCTTATTCTATCTCCC 2.0 49.1 9 173-192 D15Mit124 AGGAGAGAACCAACTGCTGC GGCCAGTGATGACTTTATAATGC 2.5 59.8 17 232-258 D11Mit36 CCAGAACTTTTGCTGCTTCC GTGAGCCCTAGGTCCAGTGA 2.0 58.7 15 234-256 D7Mit71 CCACCTGGAATACATGTAACCC TAAGATCCAAGAGATGGGTTAAGC

14、 2.0 49.1 11 165-200 D2Mit76 CTCAAGTCTCACTTCTCTGCACA ACACCCAAGGTTGACCTCTG 2.0 47.3 19 281-328 D3Mit130 AACACATGAAACGTGTGCGT TGATAGGCATGCTTAAGCCC 2.0 50.6 11 213-251 D19Mit1 AATCCTTGTTCACTCTATCAAGGC CATGAAGAGTCCAGTAGAAACCTC 2.0 49.1 15 133-165 D11Mit35 AGTAACATGGAACATCGACGG TGCTCAGCTCTGGAGTGCTA 2.0 4

15、8.1 13 287-307 D17Mit38 CCTCTGAGGAGTAACCAAGCC CACAGAGTTCTACCTCCAACCC 2.0 52.6 14 195-251 DXMit17 CCTGTTTGGGCACCTAGATT TAATAACCCATGTTTTCTGTGGG 2.0 48.1 9 234-251 D8Mit56 ACACTCAGAGACCATGAGTACACC GAGTTCACTACCCACAAGTCTCC 2.0 50.6 9 100-126 D10Mit66 TCTCCTTGGAATTCACAGCC GACATTCCTTAAGAGAGACAGTCC 2.0 54.7

16、 14 272-298 D13Mit1 TCATTCAACATTCTGTCAATCG CACAACAAGGTTAACCTCTAGACA 2.0 49.0 14 104-132 DB33/T 2110.3 2018 5 A.4 PCR扩增 A.4.1 PCR扩增的体系 PCR总反应体积为 15 l， 其中含 10PCR buffer:1.5 l，上下游引物 (100 pmol/L) 各 1 L， 4 dNTP 100 mol/L： 1 L， Taq 酶 1U： 1 L， 50 ng 100 ng 基因组 DNA： 1 L，纯水 (ddH2O)： 8.5 L。 PCR反应程序为： 95 预变性，

17、4 min； 94 变性， 30 s；退火温度（各位点序列 、 PCR反应条件 参见表 A.1），30 s； 72 延伸， 30 s； 35 个循环； 72 继续延伸 7 min；扩增产物 4 保存。 A.4.2 PCR产物的检测 PCR产物，经 1.5%的琼脂糖凝胶电泳以及凝胶成像系统拍照检测扩增结果。 A.4.3 扩增产物的 STR扫描 扩增产物经过琼脂糖凝胶电泳检测确保扩增出目的片断后，选择分别以 FAM、 HEX、 TAMRA标记的三个位点的扩增产物，以 1:3:5体积比混合，取 1 l上样进行 STR扫描 。 A.5 STR扫描结果的判读与统计分析 A.5.1 STR扫描结果的判读

18、扫描结果可出现两种波形：一种为纯合基因型，只有一个主波；另一种为杂合基因型，有两个主波。 由群体遗传分析软件读出每个样本在每个微卫星位点的扩增片断大小。每个位点的等位基因根据扩增片断从小到大顺序排列记录为 a,b,c,d 等。 A.5.2 运用群体遗传分析软件对数据进行统计分析 将所有样本的每个微卫星位点的基因型以 ab,bb 等形式运用软件的数据文件，计算样品在各微卫星位点上的基因频率、平均观察等位基因数、平均有效等位基因数（ Ne）、香隆指数、平均杂合度（ H）等。 A.6 结果判断 群体内遗传变异采用平均杂合度指标或群体平衡状态方法进行评价。 当用杂合度来判定时 ,平均杂合度 在 0.5 0.7的群体，判定为合格的封闭群群体。当用是否达到平衡状态来判定时，按照哈代 -温伯格（ Hardy-Weiberg）定律，根据各位点的等位基因数计算封闭群的基因频率，进行 2检验。如果没有达到平 衡状态，说明群体的基因频率或基因型频率发生变化，该封闭群群体判为不合格。 _