1、 中华人民共和国国家标准GB 4789.402010食品安全国家标准 食品微生物学检验 阪崎肠杆菌检验 National food safety standard Food microbiological examination： Enterobacter sakazakii 中华人民共和国卫生部发布 2010-03-26 发布 2010-06-01 实施 GB 4789.402010 I 前 言 本标准代替 GB/T 4789.40-2008 食品卫生微生物学检验 阪崎肠杆菌检验 。 本标准与 GB/T 4789.40-2008 相比，主要变化如下： 修改了标准的中英文名称； 删除了附录 A
2、 中 A.3。 本标准的附录 A、附录 B 为规范性附录。 本标准所代替的历次版本发布情况为： GB/T 4789.40-2008。GB 4789.402010 1 食品安全国家标准 食品微生物学检验 阪崎肠杆菌检验 1 范围 本标准规定了食品中阪崎肠杆菌（ Enterobacter sakazakii）的检验方法。 本标准适用于婴幼儿配方食品、乳和乳制品及其原料中阪崎肠杆菌的检验。 2 设备和材料 除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下： 2.1 恒温培养箱： 25 1 ， 36 1 ， 44 0.5 。 2.2 冰箱： 2 5 。 2.3 恒温水浴箱： 44 0.5 。 2
3、.4 天平：感量 0.1 g。 2.5 均质器。 2.6 振荡器。 2.7 无菌吸管： 1 mL（具 0.01 mL 刻度） 、 10 mL（具 0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头。 2.8 无菌锥形瓶：容量 100 mL、 200 mL、 2000 mL。 2.9 无菌培养皿：直径 90 mm。 2.10 pH 计或 pH 比色管或精密 pH 试纸。 2.11 全自动微生物生化鉴定系统。 3 培养基和试剂 3.1 缓冲蛋白胨水（ buffer peptone water， BPW） ：见附录 A 中 A.1。 3.2 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤 -万古霉素（ modified laur
4、yl sulfate tryptose broth-vancomycin medium， mLST-Vm） ：见附录 A 中 A.2。 3.3 阪崎肠杆菌显色培养基。 3.4 胰蛋白胨大豆琼脂（ trypticase soy agar， TSA） ：见附录 A 中 A.3。 3.5 生化鉴定试剂盒。 3.6 氧化酶试剂：见附录 A 中 A.4。 3.7 L-赖氨酸脱羧酶培养基：见附录 A 中 A.5。 GB 4789.402010 2 3.8 L-鸟氨酸脱羧酶培养基：见附录 A 中 A.6。 3.9 L-精氨酸双水解酶培养基：见附录 A 中 A.7。 3.10 糖类发酵培养基：见附录 A 中
5、A.8。 3.11 西蒙氏柠檬酸盐培养基：见附录 A 中 A.9。 GB 4789.402010 3 1 mL + mLST-Vm 10 mL 挑取疑似菌落 第一法 阪崎肠杆菌的检验 4 检验程序 阪崎肠杆菌检验程序见图 1。 图 1 阪崎肠杆菌检验程序 5 操作步骤 5.1 前增菌和增菌 取检样 100 g（ mL）加入已预热至 44 装有 900 mL 缓冲蛋白胨水的锥形瓶中，用手缓缓地摇动至充分溶解， 36 1 培养 18 h2 h。移取 1 mL 转种于 10 mL mLST-Vm 肉汤， 44 0.5 培养 24 h2 h。 5.2 分离 5.2.1 轻轻混匀 mLST-Vm 肉汤培
6、养物，各取增菌培养物 1 环，分别划线接种于两个阪崎肠杆菌显色36 1 ， 18 h2 h报 告 TSA生化鉴定 挑取黄色菌落 检样 100 g（ mL） +BPW 稀释液 900 mL 44 0.5 ， 24 h2 h阪崎肠杆菌显色培养基 36 1 ， 24 h2 h25 1 ， 48 h4 hGB 4789.402010 4 培养基平板， 36 1 培养 24 h2 h。 5.2.2 挑取 1 个 5 个可疑菌落，划线接种于 TSA 平板。 25 1 培养 48 h4 h。 5.3 鉴定 自 TSA 平板上直接挑取黄色可疑菌落，进行生化鉴定。阪崎肠杆菌的主要生化特征见表 1。可选择生化鉴定
7、试剂盒或全自动微生物生化鉴定系统。 表 1 阪崎肠杆菌的主要生化特征 生化试验 特 征 黄色素产生 氧化酶 L-赖氨酸脱羧酶 L-鸟氨酸脱羧酶 （） L-精氨酸双水解酶 柠檬酸水解 （） D-山梨醇 （） L-鼠李糖 D-蔗糖 D-蜜二糖 发酵 苦杏仁甙 注： 99%阳性； 99%阴性；（） 90% 99%阳性；（） 90% 99%阴性。 6 结果与报告 综合菌落形态和生化特征，报告每 100 g（ mL）样品中检出或未检出阪崎肠杆菌。 第二法 阪崎肠杆菌的计数 7 操作步骤 7.1 样品的稀释 7.1.1 固体和半固体样品： 无菌称取样品 100 g、 10 g、 1 g 各三份， 加入已预
8、热至 44 分别盛有 900 mL、90 mL、 9 mL BPW 中，轻轻振摇使充分溶解，制成 1:10 样品匀液，置 36 1 培养 18 h2 h。分别移取 1 mL 转种于 10 mL mLST-Vm 肉汤， 44 0.5 培养 24 h2 h。 7.1.2 液体样品： 以无菌吸管分别取样品 100 mL、 10 mL、 1 mL 各三份，加入已预热至 44 分别盛有 900 mL、 90 mL、 9 mL BPW 中， 轻轻振摇使充分混匀， 制成 1:10 样品匀液， 置 36 1 培养 18h2h。分别移取 1 mL 转种于 10 mL mLST-Vm 肉汤， 44 0.5 培养
9、24 h2 h。 7.2 分离、鉴定 同 5.2， 5.3。 8 结果与报告 GB 4789.402010 5 综合菌落形态、 生化特征， 根据证实为阪崎肠杆菌的阳性管数， 查 MPN 检索表， 报告每 100 g（ mL）样品中阪崎肠杆菌的 MPN 值（见附录中表 B.1） 。 GB 4789.402010 6 附录A （规范性附录） 培养基和试剂 A.1 缓冲蛋白胨水（BPW） A.1.1.1 成分 蛋白胨 10.0g氯化钠 5.0 g磷酸氢二钠（ Na2HPO412H2O） 9.0 g磷酸二氢钾 1.5 g蒸馏水 1 000 mLpH 7.2 A.1.1.2 制法 加热搅拌至溶解 ,调节
10、 pH， 121 高压灭菌 15 min。 A.2 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤-万古霉素 （ Modified lauryl sulfate tryptose broth-vancomycin medium， mLST-Vm） A.2.1 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨（ mLST）肉汤 A.2.1.1 成分 氯化钠 34.0 g胰蛋白胨 20. g乳糖 5.0 g磷酸二氢钾 2.75 g磷酸氢二钾 5 g 十二烷基硫酸钠 0.1 g蒸馏水 1 000 mLpH 6.80.2 A.2.1.2 制法 加热搅拌至溶解，调节 pH。分装每管 10 mL， 121 高压灭菌 15 min。 A.2.2 万
11、古霉素溶液 A.2.2.1 成分 万古霉素 10.0 mg蒸馏水 mLA.2.2.2 制法 10.0 mg 万古霉素溶解于 10.0 mL 蒸馏水，过滤除菌。万古霉素溶液可以在 0 5 保存 15 天。 A.2.3 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤 -万古霉素（ Modified lauryl sulfate tryptose broth-vancomycin medium， mLST-Vm） 每 10 mL mLST 加入万古霉素溶液 0.1 mL，混合液中万古霉素的终浓度为 10 g/ mL。 注： mLST-Vm 必须在 24 h 之内使用。 A.3 胰蛋白胨大豆琼脂（TSA） A.3.1
12、成分 GB 4789.402010 7 胰蛋白胨 15.0 g植物蛋白胨 5.0 g氯化钠 5.0 g琼脂 15.0 g蒸馏水 1 00 mLpH 7.30.2 A.3.2 制法 加热搅拌至溶解，煮沸 1 min，调节 pH， 121 高压 15 min。 A.4 氧化酶试剂 A.4.1 成分 N,N,N,N-四甲基对苯二胺盐酸盐 1.0 g蒸馏水 100 mLA.4.2 制法 少量新鲜配制，于冰箱内避光保存，在 7 d 之内使用。 A.4.3 试验方法 用玻璃棒或一次性接种针挑取单个特征性菌落，涂布在氧化酶试剂湿润的滤纸平板上。如果滤纸在10 s 之内未变为紫红色、紫色或深蓝色，则为氧化酶试
13、验阴性，否则即为氧化酶实验阳性。 注 ：实验中切勿使用镍 /铬材料。 A.5 L-赖氨酸脱羧酶培养基 A.5.1 成分 L-赖氨酸盐酸盐（ L-lysine monohydrochloride） 5.0 g酵母浸膏 3.0 g葡萄糖 1.0 g溴甲酚紫 0.015 g蒸馏水 1 000 mLpH 6.80.2 A.5.2 制法 将各成分加热溶解，必要时调节 pH。每管分装 5 mL， 121 高压 15 min。 A.5.3 实验方法 挑取培养物接种于 L-赖氨酸脱羧酶培养基，刚好在液体培养基的液面下。 30 1 培养 24 h2 h，观察结果。 L-赖氨酸脱羧酶试验阳性者，培养基呈紫色，阴性
14、者为黄色。 A.6 L-鸟氨酸脱羧酶培养基 A.6.1 成分 L-鸟氨酸盐酸盐（ L-ornithine monohydrochloride） 5.0 g酵母浸膏 3.0 g葡萄糖 1.0 g溴甲酚紫 0.015 g蒸馏水 1 000 mLpH 6.80.2 A.6.2 制法 将各成分加热溶解，必要时调节 pH。每管分装 5 mL。 121 高压 15 min。 GB 4789.402010 8 A.6.3 实验方法 挑取培养物接种于 L-鸟氨酸脱羧酶培养基，刚好在液体培养基的液面下。 30 1 培养 24 h2 h，观察结果。 L-鸟氨酸脱羧酶试验阳性者，培养基呈紫色，阴性者为黄色。 A.7
15、 L-精氨酸双水解酶培养基 A.7.1 成分 L-精氨酸盐酸盐（ L-arginine monohydrochloride） 5.0 g酵母浸膏 3.0 g葡萄糖 1.0 g溴甲酚紫 0.015 g蒸馏水 1 000 mLpH 6.80.2 A.7.2 制法 将各成分加热溶解，必要时调节 pH。每管分装 5 mL。 121 高压 15 min。 A.7.3 实验方法 挑取培养物接种于 L-精氨酸脱羧酶培养基，刚好在液体培养基的液面下。 30 1 培养 24 h2 h，观察结果。 L-精氨酸脱羧酶试验阳性者，培养基呈紫色，阴性者为黄色。 A.8 糖类发酵培养基 A.8.1 基础培养基 A.8.1
16、.1 成分 酪蛋白（酶消化） 10.0 g氯化钠 5.0 g酚红 0.02 g蒸馏水 1 000 mLpH 6.80.2 A.8.1.2 制法 将各成分加热溶解，必要时调节 pH。每管分装 5 mL。 121 高压 15 min。 A.8.2 糖类溶液（ D-山梨醇、 L-鼠李糖、 D-蔗糖、 D-蜜二糖、苦杏仁甙） A.8.2.1 成分 糖 8.0 g蒸馏水 100 mLA.8.2.2 制法 分别称取 D-山梨醇、 L-鼠李糖、 D-蔗糖、 D-蜜二糖、苦杏仁甙等糖类成分各 8 g，溶于 100 mL 蒸馏水中，过滤除菌，制成 80 mg/mL 的糖类溶液。 A.8.3 完全培养基 A.8.
17、3.1 成分 基础培养基 875 mL糖类溶液 12 mLA.8.3.2 制法 无菌操作，将每种糖类溶液加入基础培养基，混匀；分装到无菌试管中，每管 10 mL。 A.8.4 实验方法 挑取培养物接种于各种糖类发酵培养基，刚好在液体培养基的液面下。 30 1 培养 24 h2 h，观察结果。糖类发酵试验阳性者，培养基呈黄色，阴性者为红色。 GB 4789.402010 9 A.9 西蒙氏柠檬酸盐培养基 A.9.1 成分 柠檬酸钠 2.0 g氯化钠 5.0 g磷酸氢二钾 1.0 g磷酸二氢铵 g硫酸镁 0.2 g溴百里香酚蓝 0.08 g琼脂 8.0 g 18.0 g蒸馏水 1 000 mLpH
18、 6.80.2 A.9.2 制法 将各成分加热溶解，必要时调节 pH。每管分装 10 mL， 121 高压 15 min，制成斜面。 A.9.3 实验方法 挑取培养物接种于整个培养基斜面， 36 1 培养 24 h2 h，观察结果。阳性者培养基变为蓝色。 GB 4789.402010 10 附录 B （规范性附录） 阪崎肠杆菌最可能数（MPN）检索表 B.1 阪崎肠杆菌最可能数（MPN）检索表 每 100 g（ mL）检样中阪崎肠杆菌最可能数（ MPN）的检索见表 B.1。 表 B.1 阪崎肠杆菌最可能数（MPN）检索表 阳性管数 95%可信限 阳性管数 95%可信限 100 10 1 MPN
19、 下限 上限 100 10 1 MPN 下限 上限0 0 0 0.3 - 0.95 2 2 0 2.1 0.45 4.2 0 0 1 0.3 0.015 0.96 2 2 1 2.8 0.87 9.4 0 1 0 0.3 0.015 1.1 2 2 2 3.5 0.87 9.4 0 1 1 0.61 0.12 1.8 2 3 0 2.9 0.87 9.4 0 2 0 0.62 0.12 1.8 2 3 1 3.6 0.87 9.4 0 3 0 0.94 0.36 3.8 3 0 0 2.3 0.46 9.4 1 0 0 0.36 0.017 1.8 3 0 1 3.8 0.87 11 1 0
20、1 0.72 0.13 1.8 3 0 2 6.4 1.7 18 1 0 2 1.1 0.36 3.8 3 1 0 4.3 0.9 18 1 1 0 0.74 0.13 2 3 1 1 7.5 1.7 20 1 1 1 1.1 0.36 3.8 3 1 2 12 3.7 42 1 2 0 1.1 0.36 4.2 3 1 3 16 4 42 1 2 1 1.5 0.45 4.2 3 2 0 9.3 1.8 42 1 3 0 1.6 0.45 4.2 3 2 1 15 3.7 42 2 0 0 0.92 0.14 3.8 3 2 2 21 4 43 2 0 1 1.4 0.36 4.2 3 2
21、3 29 9 100 2 0 2 2 0.45 4.2 3 3 0 24 4.2 100 2 1 0 1.5 0.37 4.2 3 3 1 46 9 200 2 1 1 2 0.45 4.2 3 3 2 110 18 410 2 1 2 2.7 0.87 9.4 3 3 3 110 42 - 注 1：本表采用 3 个检样量 100 g(mL)、 10 g(mL)和 1 g(mL)，每个检样量接种 3 管。 注 2：表内所列检样量如改用 1 000 g(mL)、 10 g(mL)、和 1 g(mL)时，表内数字应相应降低 10 倍；如改用10 g(mL)、 1 g(mL)、和 0.1 g(mL) 时，则表内数字应相应增高 10 倍，其余类推。
