1、ICS 65120B 46 a雪中华人民共和国国家标准GBT 211002007动物源性饲料中骆驼源性成分定性检测方法PCR方法Identification of Camelidae derived materials in animaloriginated feedstuffs-PCR method2007-1 0-24发布 2008-04-0 1实施中华奎匿共和国国塞质量监督检验检疫总局磐右中国国家标准化管理委员会捉111刚 肓GBT 211002007本标准的附录A为资料性附录。本标准由中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局提出。本标准由全国饲料工业标准化技术委员会归口。本标准起草单位：
2、中国检验检疫科学研究院、中华人民共和国辽宁出入境检验检疫局、中华人民共和国山东出入境检验检疫局、中华人民共和国深圳出入境检验检疫局。本标准主要起草人：陈颖、吴亚君、徐宝梁、王晶、曹际娟、高宏伟、宗卉、黄文胜、袁飞、赵贵明。本标准首次发布。动物源性饲料中骆驼源性成分定性检测方法PCR方法GBT 21 10020071范围本标准规定了动物源性饲料中骆驼(Camelidae)源性成分检测的PCR方法，该检测方法的检出限为01(质量分数)。本标准适用于动物源性饲料中骆驼源性成分的定性检测。2规范性引用文件下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是注日期的引用文件，其随后所有的修改单(不包
3、括勘误的内容)或修订版均不适用于本标准，然而，鼓励根据本标准达成协议的各方研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件，其最新版本适用于本标准。GB 6682分析实验室用水规格和试验方法GBT 146991饲料采样(GBT 1469912005，IsO 6497：2002，IDT)SNT 1 193基因检验实验室技术要求3术语和定义下列术语和定义适用于本标准。31聚合酶链式反应polymere chain reaction；PCR用于扩增位于两段已知序列之间的DNA(deoxyribonucleosidea acid，脱氧核糖核酸)的方法。模板DNA经过高温变性成单链，在DNA聚合
4、酶和适宜的温度下，两条互不互补的寡核昔酸片段即引物分别与模板DNA两条链上的一段互补序列发生退火，接着在DNA聚合酶的催化下以4种dNTP(deoxyribonucleoside triphosphate，脱氧核苷酸三磷酸)为底物，使退火引物得以延伸，如此反复变性、退火和DNA合成这一循环，使位于两段已知序列之间的DNA片段呈几何倍数扩增，经25个-30个扩增循环，扩增倍数达到约106。4原理利用裂解液破碎细胞，三氯甲烷抽提蛋白质，无水乙醇沉淀得到DNA；以提取的DNA为模板进行PCR扩增，琼脂糖凝胶电泳检测PCR扩增产物；PCR阳性产物应用限制性内切酶酶切反应进行确证。5试剂和材料除另有规定
5、外，试剂为分析纯或生化试剂。实验用水符合GB 6682的要求。51骆驼源性成分检测用引物(对)序列为：F：5一AGCCTTCTCTTCAGTCGCACAC-3R：5一GCCCATGAAAGCTGTTGCT一352 TaqDNA聚合酶(Taq，Thermus aquaticu，水生栖热菌)。53限制性内切酶：Taq I酶。54 dNTPs：dATP(deoxyadenosine triphosphate，脱氧腺苷三磷酸)、dTTP(deoxythymidine triphos一】GBT 211002007phate，脱氧胸苷三磷酸)、dCTP(deoxycytidine triphosphate
6、，脱氧胞苷三磷酸)、dGTP(deoxyguanosinetriphosphate，脱氧鸟苷三磷酸)。55琼脂糖：电泳纯。56溴化乙锭。57三氯甲烷。58无水乙醇。59 70乙醇。510 DNA分子量标准品(100 bp600 bp)(bp：base pair，碱基对)。511裂解液：1CTAB(eetyltrithylammonium bromide，十六烷基三甲基溴化铵)，005 molL Tris-HCI(pH 80)-Tris一：tris(hydroxymethyl)aminomethane，三(羟甲基)氨基甲烷，07 molL NaCI，00l molL EDTA(pH8o)(eth
7、ylene diaminetetraacetie acid，乙二胺四乙酸)。512 TE缓冲液(TrisHCI、EDTA缓冲液)：10 mmolL TrisHCl(pH8o)，1 mmolL EDTA(pH80)。513 10PCR缓冲液：100mmolLKCI，160mmolL(NHt)2sq，20mmolLMgS04，200mmolLTrisHCI(pH88)，1Triton X100(toctylphenoxyp01yethoxyethan01，辛基苯氧基聚乙氧乙醇)，1 mgmL BSA(bovine serum albumin，牛血清蛋白)。514电泳缓冲液：Iris 54 g，硼酸
8、275 g，05 molL TE缓冲液(pH80)20 mL，加蒸馏水至1 000 rilL!使用时10倍稀释。515溴化乙锭贮存液：用水配制成10 mgmL。516加样缓冲液：025溴酚蓝，40(质量浓度)蔗糖水溶液。517酶切缓冲液：10mmolLIris Hcl(pH75)，10mmolLMgCl2，50mmolLNaCI，01mgmLBSA。6仪器设备61 DNA热循环仪。62核酸蛋白分析仪或紫外分光光度计。63恒温水浴锅。64离心机：离心力12 000 g。65微量移液器(05 pL10 pL，10 gL100 gL。10 gL200 ttL，100弘L1 000 ttL)。66电泳
9、仪。67紫外检测仪。68 pH计。69天平：感量001 g。7试样选取与制备按照GBT 146991采样，将实验室样品粉碎，充分混合均匀后待用。8检验步骤81样品的总DNA提取样品粒度100目时最少称取50 mg；60目时最少称取100 mg；20目时最少称取200 mg。称取样品于微量离心管中，加入600 pL800 pL裂解液，65C 3 h，期间不时振荡混匀；12 000 g离心5 rain，转移上清于洁净离心管中，加等体积酚，混匀；12 000 g离心5 rain，转移上清于洁净离心管中，加等体积三氯甲烷+异戊醇(24+1)，混匀；12 000 g离心5 min，取上清液；加2倍体积冰
10、预冷的无水乙醇，-20沉淀1 h；12 000 g离心5 min，弃上清液；70乙醇洗涤一次，晾干；加入50 pL TE，溶解2GBT 21100一2007沉淀。也可用等效DNA提取试剂盒提取模板DNA。82 DNA浓度和纯度的测定取5 pLDNA溶液加双蒸水稀释至1 mL，使用核酸蛋白分析仪或紫外分光光度计分别检测260 nrn和280 nm处的吸光值Am和Am。DNA的浓度按式(1)计算：fAN501 000 (1)式中：cDNA浓度，单位为微克每微升(pgvL)；A260 nm处的吸光值；N核酸稀释倍数。当A。Am比值在1719之间时，适宜于PCR扩增。83 PcR扩增50 pL反应体系
11、：10XPCR缓冲液5 pL、dNTP(5mmolL)1tzL、引物对(各5 vmolL)2 vL、TaqDNA聚合酶2 u、模板DNA 100 ng士50 ng。一般反应程序：94C预变性5 min，9423变性30 s，63C退火30 st7223延伸30 s，30个循环。72延伸5rain。4保存。检测过程中分别设阳性对照、阴性对照和空白对照。用已知含骆驼源性成分的样品作阳性对照，用已知不含骆驼源性成分的样品作阴性对照，用等体积的双蒸水代替模板DNA作空白对照。84 PcR扩增产耪电濠检测取2 g琼脂糖，于100 mL电泳缓冲液中加热，充分熔化，加人溴化乙锭贮存液至终浓度为05 vgmL
12、，制胶。在电泳槽中加入电泳缓冲液，使液面刚刚没过凝胶。将5 pL8 pL PCR扩增产物分别和适量加样缓冲液混合，点样。9 Vcm恒压电泳，直至溴酚蓝指示剂迁移至凝胶中部。紫外检测仪下观察电泳结果并记录。85限制性内切酶酶切殛产物电泳检测如果PCR扩增产物电泳检测结果阳性，进行限制性内切酶酶切反应。反应体系(20 vL)：Taq I酶2 u，酶切缓冲液2 pL，加入PCR扩增产物至总体积20 pL。酶切在65或37*(2下进行，30 min。酶切完成后电泳，方法见84。9结果判断与表述91 PCR扩增产物电泳检测结果阳性样品扩增产物为208 bp(序列参考附录A)。92限制性内切蕞磷切电渌拴潮
13、结果扩增产物酶切片段大小为153 bp和55 bp。93结果表述PCR产物为阳性，同时酶切结果正确者判为含有骆驼源性成分，表述为检出骆驼源性成分PCR产物为阴性者判为不含有骆驼源性成分。表述为未检出骆驼源性成分。10检测过程中防止交叉污染的措施按照SNT1193执行。11废弃物处理检测过程中的废弃物，收集后在焚烧炉中焚烧处理。GBT 211002007附录A(资料性附录)PCR产袖测序结果AGCCTTCTCTTCAGTCGCACACATCTGCCGAGATGTTAACTACGGCTGAATCATTCGATATTTACATGCTAACGGAGCTTCCATATTCTTCATTTGCTTATATATTCACGTGGGTCGCGGGCTTTATTACGGCTCGTATACCTTTTCAGAAACCTGAAACGTTGGAATKGTTTTATTGTTCACAGTAATAGCAACAGCTTTCATGGGC
