1、ICS 07.140 C 06 SF 中 华 人 民 共 和 国 司 法 行 政 行 业 标 准 SF/T 0070 2020 染色体遗传标记高通量测序与法医学应用 规范 Specification for high-throughput sequencing of chromosomal genetic markers and its forensic applications 2020 - 05 - 29发布 2020 - 05 - 29实施 中华人民共和国司法部 发布 SF/T 0070 2020 I 目 次 前言 . II 1 范围 . 1 2 规范性引用文件 . 1 3 术语和定义
2、. 1 4 缩略语 . 4 5 总体要求 . 4 6 检验程序 . 5 7 结果分析 . 7 8 结果应用 . 8 参考文献 . 9 SF/T 0070 2020 II 前 言 本标准按照 GB/T 1.1 2009给 出的规则起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任。 本标准由司法鉴定科学研究院提出。 本标准由司法部信息中心归口 。 本标准起草单位：司法鉴定科学研究院、四川大学、中山大学、复旦大学、河北医科大学。 本标准主要起草人：李成涛、张素华、侯一平、孙宏钰、谢建辉、李淑瑾。 SF/T 0070 2020 1 染色体遗传标记高通量测序与法医学应
3、用规范 1 范围 本标准 规定 了染色体遗传标记高通量测序的 总体要求 、 检验程序、结果分析 和 结果应用。 本标准 适用于人体血液（斑）、口腔拭子（唾液斑）、精液（斑）、带毛囊毛发 、羊水 和 组织块等 检材 的 染色体遗传标记高通量测序与法医学应用。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文件。 凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 27025 检测 和 校准实验室能力的通用要求 GB/T 37223 2018 亲权鉴定技术规范 SF
4、/Z JD0105011 2018 法医学 STR基因座命名规范 SF/Z JD0105012 2018 个体 识别技术规范 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 基因座 locus 基因在染色体上所占的位置。 3.2 等位基因 allele 位于同源染色体的相同位置上有差异的 DNA片段互称为等位基因。 3.3 基因型 genotype 个体在一个或者多个基因座上等位基因的组合。 3.4 杂合子 heterozygote 二倍体中同源染色体同一位点上的两个等位基因不相同的基因型个体。 SF/T 0070 2020 2 3.5 纯合子 homozygote 二倍体中同源染色体同
5、一位点上的两个等位基因相同的基因型个体 。 3.6 微变异等位基因 /中间等位基因 microvariant allele/ intermediate allele STR基因座上表现为含有不完整重复单位的等位基因。 3.7 文库 library 通过生物来源、人工合成或克隆技术等获取的重建分子群 。 注： 如基因组文库、互补 DNA文库、噬菌体展示文库等。 3.8 短串联重复序列 short tandem repeat， STR 人类基因组中由 2 6个碱基对作为核心单位，串联重复所形成的一类多态性遗传标记。 3.9 单核苷酸多态性 single nucleotide polymorphis
6、m， SNP 人类基因组中同一位置由单个核 苷酸的变异所形成的一类多态性遗传标记。 3.10 插入缺失多态性 insertion deletion polymorphism， InDel 人类基因组中插入或缺失不同长度 DNA片 段所形成的一类多态性遗传标记。 3.11 引物 primer 在 DNA复制过程中，能与模板链互补并作为复制延伸的起始点、具有一定长度和碱基顺序的寡核苷 酸链。 3.12 DNA聚合酶 DNA polymerase 以 DNA单链为模板，基于碱基互补配对原则，催化底物脱氧核糖核苷三磷酸分子生成双链 DNA时 所需 要的酶。 3.13 聚合酶链反应 polymerase
7、 chain reaction， PCR 模板 DNA先经高温变性为 两条 单链，在适宜的温度下，成对的引物分别与 两条 模板 DNA单 链上的一段 互补序列发生退火，随后在 DNA聚合酶作用下，以四种 dNTP（ dATP、 dGTP、 dTTP、 dCTP）为底物，催化 磷酸二酯键形成，使引物得以延伸，如此反复变性、退火和延伸这一循环，使位于两段靶序列之间的 DNA 片段呈几何倍数扩增 。 SF/T 0070 2020 3 3.14 乳液聚合酶链反应 emulsion polymerase chain reaction， ePCR 乳化 PCR 按照一定的混合比例，将用于 PCR反应的水相
8、 体系与油相体系混合，产生大量油包水的微乳液滴， 每个微乳液滴形成独立 PCR反应空间；如果 PCR反应体系中加入的核酸模板数量合适，每个微乳液滴内将 只含有一个模板分子；然后，每个微乳液滴进行平行扩增，即可同时得到大量模板分子的扩增产物。 3.15 桥式聚合酶链反应 bridge polymerase chain reaction 桥式 PCR bridge PCR 连接在芯片上的 DNA单链的 3 末端序列与邻近的连接在芯片上的寡核苷酸链以碱基互补的形式进 行结合；然后，在 PCR反应过程中，以该寡核苷酸链作为引物进行扩增生成新的 单链。如此反复该过程， 可以获得含有单分子的簇 。 3.1
9、6 高通量测序 high-throughput sequencing 大规模平行测序 massively parallel sequencing， MPS 下一代测序 next generation sequencing， NGS 二代测序 second generation sequencing， SGS 能 同时 对大量 DNA分子进行序列测定的技术 。 注： 通常一次测序反应能产生不低于 100Mb的 测序数据。 3.17 接头 adapter 一段人工合成的长度较短的能与平末端或者黏性 末端匹配（连接）的 DNA片段 。 3.18 碱基识别 base calling 测序过程中荧光信号
10、或其它测序反应产生的信号转换为碱基序列信息的过程。 3.19 测序通量 sequencing throughput 单次测序可获得 DNA序列信息的数 据量 。 注： 通常 以碱基数表示。 3.20 测序读长 read length of gene sequencing 测序能测得的 DNA片段的 长度 。 注： 以碱基数表示。 3.21 测序深度 sequencing depth SF/T 0070 2020 4 待测遗传标记进行高通量测序 获得的总碱基数 与遗传标记大小的比值。 注： 通常 以次数（）表示 。 3.22 碱基识别正确率 accuracy of base calling 单次
11、测序正确的碱基数占测序获得的总碱基数比例。 3.23 碱基识别错误率 inaccuracy of base calling 单次测序错误的碱基数占测序获得的总碱基数比例。 3.24 碱基识别质量 quality of base calling 衡量碱基正确识别的概率。 通常 以数字值直接表示。 碱基识别质量与碱基识别错误率之间的关系可用公式（ 1）表示： . （ 1） 式 中： Q 碱基识别质量； P 碱基识别错误率。 3.25 等位基因测序深度比 allele coverage (count) ratio， ACR 位于常染色体和 X染色体上的 基因座 为 杂合子时，两个等位基 因的测序深度
12、的百分比值 。 注： 常用来评估遗传标记经高通量测序后杂合子 的两个等位基因被检测的 均衡性。 4 缩略语 下列缩略语适用于本文件。 CPI 累积亲权指数（ Combined Parentage Index） DNA 脱氧核糖核酸（ Deoxyribonucleic Acid） LR 似然率（ Likelihood Ratio） PI 亲权指数（ Parentage Index） 5 总体要求 5.1 人员 鉴定人应具有法医物证鉴定执业资格，熟悉并掌握基于高通量测序进行染色体遗传标记检测的原理 和方法，并能使用分析软件对测序结果进行正确的分析与评价。 5.2 检测步骤 使用高通量测序仪进行染色
13、体遗传标记检测的步骤 如下 ： SF/T 0070 2020 5 a) 采样 ； b) DNA提取和定量 ； c) 构建测序文库（遗传标记的靶向富集、连接接头、文库扩增与文库质控） ； d) 高通量测序（选择合适的文库上机浓度、测序模板的制备与测序） ； e) 结果分析与结果应用。 测序活动完毕后，应将各个环节的记录进行 分类 归档。 注： 本标准中染色体遗传标记指分布于人类基因组常染色体和性染色体上的 STR、 SNP以及 InDel遗传标记。 5.3 实验室设施与环境 实验室的 设施与 环境 除 应符合 GB/T 27025的规定 外，还 包括 ： a) 实验室宜根据处理步骤设置分隔独立的
14、工作区域，并有明显的标识，各区间不能直通 ； b) 各区之间如果是紧密相连， 应 安装物品传递舱 ； c) 所有实验操作宜在规定区域进行。 6 检验程序 6.1 基本要求 6.1.1 实验室应对采用的高通量测序仪撰写作业指导书，并组织实验人员进行培训与考核。 6.1.2 实验室应对采用的商品化或自行开发的染色体遗传标记高通量检测试剂盒进行法医学验 证，包 括但不限于准确性、灵敏度、稳定性、种属特异性 验证 及遗传标记的群体遗传学参数调查。实验室也可 采用已公开发表的文献或出版物中提供的法医学验证结果。 6.1.3 实验室应根据采用的商品化或自行开发的染色体遗传标记高通量检测试剂盒及相应的高通量
15、测 序仪进行内部方法验证，并制定相应的作业指导书，内容包括但不限于： a) 实验方法：包括但不限于 DNA提取与定量方法、测序文库构建方法、文库定量与质控方法、文 库均一化方法等；其中 ，实验 对照样本包括但不限于试剂空白对照、阳性对照及阴性对照 ； b) 高通量测序结果评估方法：确定测序信息评估参数阈值 ， 应 评估的参数包括但不限于单次测序 反应的总测序数、单个样本的总测序数、正向链和反向链的测序均衡性等 ； c) 染色体 遗传标记测序结果评估方法：对 染色体 遗传标记 高通量测序结果建立合理的分析阈值， 分析阈值应 设置 为测序信息可以与背景噪音信号可靠地进行区分的最小阈值。其中，不同的
16、 遗 传标记 测序效能可能有较大差异，需要对过高或过低测序信号的 染色体 遗传标记 建立单独的分 析方法。 6.1.4 实验室应使用商品化或自行开发的软件对染色体遗传标记高通量测序结果进行分析，分析软件 应提供用户使用手册，详细描述分析方法。 示例： 针对 STR 遗传标记，分析方法描述 中应提供 STR 基因座核心重复序列的起始位置、终止位置和重复序列结构 等。 6.1.5 实验室应对所采用的软件进行准确性与科学性的验证，确保高通量测序产生的染色体遗传标记 分型结果与基于其它类型技术产生的分型结果具有一致性。 6.2 采样 样本的采集、包装及保存 的要求包括 ： a) 样本可 为 人体的 血
17、液（斑）或口腔拭子（唾液斑），也可 为 人体其它生物学样本 ； SF/T 0070 2020 6 示例： 精液（斑）、带毛囊毛发、羊水 和 组织块等 。 b) 样本应分别包装 ， 进行唯一性标识并注明采样日期； c) 样本采集后应干燥、冷藏或冷冻保存。 6.3 DNA提取和定量 6.3.1 DNA提取 DNA提取 要求包括： a) DNA 提 取 应 主要采用物理、化学或生物酶的方法，释放样本中的基因组 DNA，进一步对其进行 纯化，充分去除样本中的蛋白质、脂类等 PCR反应抑制物以及提取过程中加入的试剂 ； b) 宜采用相关商品化 DNA提取试剂盒进行待测样本 DNA 的提取。 6.3.2
18、DNA定量 DNA定量要求 包括： a) 提取后 DNA的质量和浓度应能满足下游实验要求； b) 宜采用与检材状况相适应的定量方法进行定量。 6.4 测序文库 构建 6.4.1 构建步骤 测序文库构建的步骤分为 遗传标记的靶向富集 和 文库制备 ， 其中文库制备应 包括 以下 步骤： a) 连接接头 ； b) 文库扩增； c) 文库质控。 建库过程中应设置阴性对照与 阳性对照。 6.4.2 遗传标记的靶向富集 本标准中高通量测序对象是染色体遗传标记。 目前主要采用 PCR技术靶向富集包含目标检测遗传标 记的 DNA片段 。 具体的 PCR体系及反应条件应 参 照 所采用的试剂盒说明书。 6.4
19、.3 文库制备 6.4.3.1 连接接头 应 采 用 合适 的方 法对 6.4.2中靶向富集的 PCR产物两端加上适用于相应高通量测序 仪 的接头（含有与 扩增及测序引物互补的序列），制备成两端已知的特定接头和中间未知的 DNA片段组成的 DNA分子的集合， 即待测文库。 6.4.3.2 文库扩增 文库扩增 的主要 要求 如下 ： a) 宜以 6.4.3.1中待测文库中的 DNA序列为模板进行单分子 扩增，获得用于高通量测序的测序文 库 ； b) 单分子扩增的方法宜采用桥式 PCR或乳液 PCR； c) 扩增 试剂盒内至少应包含扩增引物、高效扩增酶缓冲液 ； d) 单分子扩增产物应能满足所选用
20、高通量测序仪厂家的质量要求。 SF/T 0070 2020 7 6.4.3.3 文库质控 可采用实时荧光定量 PCR或微流体技术检验文库浓度与片段大小。质检标准 要求包括 ： a) 文库终浓度应 2nmol/L，体积 10L； b) 文库片段大小应与预期相符，且没有游离的接头序列和引物二聚体。 6.5 高通量测序 6.5.1 选择合适的文库上机浓度 文库上机浓度 的 选择 应注意 ： a) 实验人员应根据所采用的 染色体遗传标记高通量检测试剂盒 和高通量测序仪建立合适的文库 上机浓度。浓度过低，会导致仪器测序能力的浪费；浓度过高，会超过测序仪器的分辨率，从 而降低测序数据的质量甚至导致测序失败
21、 ； b) 对于不同类型甚至同一类型的不同单机，即使实验人员选择相同的上机浓度，成簇密度也可能 存在差异。实验人员应根据实践经验来修正某一台特定仪器的上机浓度，不宜照搬其它类型高 通量测序仪的上机浓度数值。 6.5.2 测序模板 制备 测序模板制备的步骤及要求如下： a) 文库变性 ； b) 将变性后的文库稀释至合适的上机浓度。 6.5.3 测序 测序要求 包括： a) 除另有规定外，试剂为生化试剂。实验用水应符合 GB/T 6682中一级水的要求 ； b) 用于对测序文库进行高通量测序的试剂盒应至少包含测序引物、高效测序反应液、缓冲液 ； c) 按要求准备好测序试剂和测序芯片，文库及试剂装载
22、操作应按照高通量测序仪系统界面提示进 行。加入底物核苷酸，在测序酶的作用下使底物核苷酸与测序文库中的待测样本 DNA模板进行 结合，同时收集该过程中产生的信号，包括但不限于荧光信号、电信号或离子信号 ； d) 测序完毕，应进行仪器清洗。 7 结果分析 7.1 高通量测序信号的分析 高通量测序仪输出序列信息后，统计测序通量和测序读长，并对测序过程中加入的阳性 对照 进行分 析，将测序得到 的原始序列比对到人类参考基因组序列 （ Hg19或 GRCh38） ，统计 相关 运行参数。 运行参 数 要求 包括 但不限于 ： a) 测序通量 100Mb； b) 碱基识别正确率 99%； c) 碱基识别质
23、量 20。 7.2 基于高通量测序的 STR 基因座的分型结果 对经 高通量测序后 STR基 因座的分型结果分析包括但不限于以下步骤： SF/T 0070 2020 8 a) 采用软件对 STR 基因座的高通量测序信息进行基因型分型分析，其中分型结果的命名应 符合 SF/Z JD0105011 2018的要求； b) 对于微变异等位基因或者未在实验室检见及文献中报道的等位基因应仔细核对序列信息 ，宜进 行再次测序及不 同测序方法的验证 。同时，实验人员应考虑软件是否对该等位基因进行了正确 的命名 ； c) 当 STR 基因座的测序深度 100 或等位基因测序深度比（ ACR） 60%时，基因座
24、的分型结果 应谨慎采纳。 7.3 基于高通量测序的 SNP位点的分型结果 对经高通量测序后 SNP位点的分型结果分析包括但不限于： a) 采用软件对 SNP位点的高通量测序信息进行基因型分型分析，其中分型结果的命名应指出： 1) 位点名称 及染色体编号 ； 2) 等位基因名称（等位基因以 A、 C、 G、 T 表示，等位基因间以 “/” 分隔） ； 3) 参考基因组版本号。 b) 当 SNP位点的测序深度 50 或 等位基因测序深度比（ ACR） 60%时，位点的分型结果应谨慎 采纳。 7.4 基于高通量测序的 InDel位点的分型结果 对经高通量测序后 InDel位点的分型结果分析包括但不限
25、于： a) 采用软件对 InDel位点的高通量测序信息进行基因型分型分析，其中分型结果的命名宜指出： 1) 位点名称及染色体编号 ； 2) 等位基因名称（插入等位基因以序列信息标示，缺失等位基因用 “ -” 进行标示 ， 等位基 因间以 “/” 分隔） ； 3) 参考基因组版本号 。 b) 当 InDel 位点的测序深度 100 或等位基因测序深度比（ ACR） 60%时，位点的分型结果应 谨慎采纳。 8 结果应用 8.1 应用于亲 权 鉴定或个体识别 应 按 照 GB/T 37223 2018中的规定 对 染色体 遗传标记高通量测序分型结果进行 PI值及 CPI值的计 算，并将其结果应用于二
26、联体亲权鉴定或三联体亲权鉴定。 应 按 照 SF/Z JD0105012 2018中的规定 对 染色体 遗传标记高通量测序分型结果进行 LR值的计算，并 将其结果应用于个体识别。 8.2 其它用途 可根据已公开发表的文献或出版物中相关方法的描述将 染色体 遗传标记高通量测序 信息 及分型结 果应用于复杂亲缘关系鉴定或 法医 DNA数据库 建设等 领域 。 SF/T 0070 2020 9 参 考 文 献 1 Parson W, Ballard D, Budowle B, et, al. Massively parallel sequencing of forensic STRs: Consid
27、erations of the DNA commission of the International Society for Forensic Genetics (ISFG) on minimal nomenclature requirements J. Forensic Sci Int Genet, 2016, 22: 54-63. 2 Scientific Working Group on DNA Analysis Methods Addendum to SWGDAM Interpretation Guidelines for Autosomal STR Typing by Forens
28、ic DNA Testing Laboratories to Address Next Generation Sequencing. 3 Sims D, Sudbery I, Ilott NE, et al. Sequencing depth and coverage: key considerations in genomic analyses J. Nat Rev Genet. 2014, 15(2):121-32. 4 Churchill JD, Novroski NMM, King JL, et al. Population and performance analyses of four major populations with Illuminas FGx Forensic Genomics System J. Forensic Sci Int Genet. 2017, 30:81-92. _
