1、GB/T 3543.71995 1 主题内容与适用范围 本标准规定了种子生活力的生化（四唑）测定、种子健康测定、种子重量测定和包衣种子质量检验方法。 本标准适用于农作物种子质量的检测。 2 引用标准 GB/T 3543.2 农作物种子检验规程 扦样 GB/T 3543.3 农作物种子检验规程 净度分析 GB/T 3543.4 农作物种子检验规程 发芽试验 3 术语 3.1 种子生活力 seed viability 种子发芽的潜在能力或种胚具有的生命力。 3.2 种子健康状况 seed health 种子是否携带病原菌（如真菌、细菌及病毒）、有害动物（如线虫及害虫）。 3.3 培养 incuba
2、tion 将种子保持在有利于病原体发育或病症发展的环境下进行培养。 3.4 千粒重 the weight of 1000 seeds 国家种子质量标准规定水分的1000粒种子的重量，以克为单位。 3.5 丸化种子 seed pellets 为精量播种，整批种子通常做成在大小和形状上没有明显差异的单粒球状种子单位。丸化种子添加的丸粒物质可能含有杀虫剂、染料或其他添加剂。 3.6 包膜种子 encrusted seed 种子形状类似于原来的种子单位，其大小和重量变化范围可大可小。包衣物质可能含有杀虫剂、杀菌剂、染料或其他添加剂。 3.7 种子毯 seed mats 种子随机成条状，簇状或散布在整片
3、用宽而薄的毯状材料（如纸或其他低级材料制成）上。 3.8 种子带 seed tapes 页码，1/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm 种子随机成簇状或单行排列在狭带的材料（如纸或其他低级材料制成）上。 3.9 处理种子 treated seed 种子用杀虫剂、染料或其他添加剂处理，不引起其大小和形状的显著变化或增加原来的重量。处理种子仍可按GB/T 3543.13543.6的规定方法进行测定。 第一篇 生活力的生化（四唑）测定 4 试剂 应用四唑的0.11.0（ m/V）溶液，1.0溶液用于不切
4、开胚的种子染色，而0.10.5溶液可用于已经切开胚的种子染色。配成的溶液须贮存在黑暗处或棕色瓶里。 如果用蒸馏水配制溶液的pH值不在6.57.5范围内，则采用磷酸缓冲液来配制。 磷酸缓冲液的配制方法如下： 溶液：称取9.078g磷酸二氢钾（KH2PO4）溶解于1000mL蒸馏水中。 溶液：称取9.472g磷酸氢二钠（Na2HPO4）或11.876g磷酸氢二钠（Na2HPO4）2H2O）溶解于1000mL的蒸馏水中。 取溶液2份和溶液3份混合即成缓冲液。 在该缓冲液中溶解准确数量的四唑盐类，以获得准确的浓度。如每100mL缓冲液中溶入1g四唑盐类即得1浓度的溶液。 5 仪器、设备 5.1 控温设
5、备 a. 电热恒温箱或发芽箱； b. 冰箱。 5.2 观察器具 a. 体视显微镜或手持放大镜； b. 光线充足柔和的灯光。 5.3 容器 a. 棕色定量加液器； b. 不同规格的染色盘。 5.4 切刺工具 单面刀片、矛状解剖针、小针等。 页码，2/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm5.5 预湿物品 滤纸、吸水纸和毛巾等。 5.6 天平 天平感量为0.001g。 5.7 其他 镊子、吸管等。 6 测定程序 6.1 试验样品的数取 每次至少测定200粒种子，从经净度分析后并充分混合的净种子中，随机数
6、取每重复100粒或少于100粒的若干副重复。如是测定发芽末期休眠种子的生活力，则单用试验末期的休眠种子。 6.2 种子的预措预湿 预措是指有些种子在预湿前须先除去种子的外部附属物（包括剥去果壳）和在种子非要害部位弄破种皮，如水稻种子脱去内外稃，刺破硬实等。 为加快充分吸湿、软化种皮，便于样品准备，以提高染色的均匀度，通常种子在染色前要进行预湿。根据种子的不同，预湿的方法有所不同。一种是缓慢润湿，即将种子放在纸上或纸间吸湿，它适用于直接浸在水中容易破裂的种子（如豆科大粒种子），以及许多陈种子和过分干燥种子；另一种是水中浸渍，即将种子完全浸在水中，让其达到充分吸胀，它适用于直接浸入水中而不会造成组
7、织破裂损伤的种子。不同种类种子的具体预湿温度和时间可参见表1。 表 1 农作物种子四唑染色技术规定 种（变种） 名 学 名 预湿方式预 湿时间 h染色前的准备溶液 浓度 35 染色 时间 h 小麦 大麦 黑麦Triticum aestivum L. Hordeum vulgare L. Secale cereale L.纸间或水中30恒温水浸种34h，或纸间12ha.纵切胚和四分之三肺乳。 b.分离带盾片的胚0.1 0.51 a.面。b.盾 片普通燕麦 裸燕麦Avena sativa L. Avena nuda L.纸间或水中a.除去稃壳，纵切胚和四分之三胚乳b.在胚部附近横切0.1 a.面。
8、b.玉米 Zea mays L. 纸间纵切胚和大部分胚乳0.1 观页码，3/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm或水中黍 粟Panicum miliaceum L. Setaria italica Beauv.纸间或水中a.在胚部附近横切 b.沿胚乳尖端纵切二分之一0.1 切开，高 粱 Sorghum bicolor（L.）Moe nch 纸间或水中纵切胚和大部分胚乳0.1 观水稻 Oryza sativa L. 纸间或水中12 纵切胚和四分之三胚乳0.1 观棉花 Gossypium spp. 纸
9、间12 a.纵切二分之一种子。 b.切去部分种皮。 c.去掉胚乳遗迹0.5 23甜荞 苦荞Fagopyrum esculentum Moench Fagopyrum tataricum（L.）Gaertn. 纸间或水中30水中34h，纸间12h沿瘦果近中线纵切1.0 23 观菜豆 豌豆 绿豆 花生 大豆 豇豆 扁豆 蚕豆Phaseolus vulgaris L.Pisum sativum L. Vigna radiata（L.）Wilczek Arachis hypogaea L. Glycine mac（L.） Merr. Vigna unguiculata Walp. Dolichos l
10、ablab L. Vicia faba L.纸间68 无须 准备 1.0 34 切种 皮叶，南瓜 Cucurbita moschata Duchesne ex Poinet 纸间在2030水中a.纵切二分之一种子 1.0 23h，但甜瓜12h除内 膜页码，4/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm 丝瓜 黄瓜 西瓜 冬瓜 苦瓜 甜瓜 瓠瓜Luffa spp. Cucumis sativus L. Citrullus lanatus Matsum.et Nakai Benincasa hispida
11、Cogn. Momordica charantia L.Cucumis melo L. Lagenaria siceraria Stand. 或水中浸68h或 纸间24hb.剥去种皮。 c.西瓜用干燥布或纸揩擦，除去表面粘液白菜型油菜 不结球白菜 结球白菜 甘蓝型油菜 甘蓝 花椰菜 萝卜 芥菜Brassica campestris L.Brassica campestris L.ssp.chinensis（L.）Makino. Brassica campestris L.ssp.pekinensis （Lour.） Olsson Brassica napus L. Brassica olera
12、cea var.capitata L. Brassica oleracea L. Var.botrytis L. Raphanus sativus L. Brassica juncea Coss.纸间或水中30 温水浸种34h，或纸间56ha.剥去种皮。 b.切去部分种皮1.0 24 a.使 胚b.种 皮露 出葱属（洋 葱、韭菜、细香葱 ） Allium spp. 纸间12 a.沿扁平面纵切，但不完全切开，基部相连。 b.切去子叶两端，但不损伤胚根及子叶0.2 0.51.5a.口，b.层 胚露 出辣椒 甜椒 茄子 番茄 Capsicum frutescens L . Capsicum frut
13、escens var.grossum Solanum melongena L. Lycopersicon lycopersicum (L.) Karsten 纸间水中在2030水中34h，或纸间12ha.在种子中心刺破种皮和胚乳。 b.切去种子末端，包括一小部分子叶0.2 0.51.5a.乳，出。b.使 胚芜菜 芹菜 胡萝卜 茴香 Coriandrum sativum L.Apium graveolens L. Daucus carota L. Foeniculum vulgare Mill. 水中在2030水中3h a.纵切种子一半，并撕开胚乳，使胚露出。 b.切去种子末端四分之一或三分之一
14、 0.10.5 624 a.开 切露 出b.露 出页码，5/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm6.3 染色前的准备 为了使胚的主要构造和活的营养组织暴露出来，便于四唑溶液快速而充分地渗入和观察鉴定，经软化的种子应进行样品准备。准备方法因种子构造和胚的位置不同而异（详见表1），如禾谷类种子沿胚纵切，伞形科种子近胚纵切，葱属沿种子扁平面纵切等。西瓜等种子预湿后表面有粘液，可采用种子表面干燥或把种子夹在布或纸间揩擦清除掉。 6.4 染色 将已准备好的种子样品放入染色盘中，加入适宜浓度的四唑溶液（表1）
15、以完全淹没种子，移置一定温度的黑暗控温设备内或弱光下进行染色反应。所用染色时间因四唑溶液浓度、温度、种子种类、样品准备方法等因素的不同而有差异。一般来说，四唑溶液浓度高，染色快；温度高，染色时间短，但最高不超过45。 到达规定时间或染色已很明显时，倒去四唑溶液，用清水冲洗。 6.5 鉴定前处理 为便于观察鉴定和计数，将已染色的种子样品，加以适当处理使胚主要构造和活的营养组织明显暴露出来，如一些豆类沿胚中轴纵切，瓜类剥去种皮和内膜等。不同种类种子的处苜蓿属 草木樨属 紫云英 Medicago ssp. Melilotus ssp. Astragalus sinicus L.水中22 无须 准备
16、0.51.0 624 除胚 露莴苣 茼蒿 Lactuca sativa L. Chrysanthemum coronarium var.spatisum 水中在30水中浸24ha.纵切种子上半部（非胚根端）。 b.切去种子末端包括一部分子叶 0.2 23 a.和 子出。b.末 端压，向日葵 Helianthus annuus L. 水中34 纵切种子上半部或除去果壳。 1.0 34 除甜菜 Beta vulgaris L. 水中18 a.除去盖着种胚的帽状物。 b.沿胚与胚乳之界线切开0.10.5 2448 扯使 胚菠菜 Spinacia oleracea L. 水中34 a.在胚与胚乳之边界
17、刺破种皮。 b.在胚根与子叶之间横切0.2 0.51.5a.子，出。b.口，页码，6/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm理方法详见表1。 6.6 观察鉴定 大中粒种子可直接用肉眼或手持放大镜进行观察鉴定，对小粒种子最好用10100倍体视显微镜进行观察。 观察鉴定时，确定种子是否具有生活力，必须根据胚的主要构造和有关活营养组织的染色情况进行正确的判断。一般的鉴定原则是：凡胚的主要构造或有关活营养组织（如葱属、伞形科和茄科等种子的胚乳）全部染成有光泽的鲜红色或染色 最大面积大于表1规定，且组织状态正
18、常的为正常有生活力的种子；否则为无生活力的种子。根据种类的不同，具体鉴定标准详见表1。 依据鉴定标准，将各部分分开和计数。 7 结果表示与报告 计算各个重复中有生活力的种子数，重复间最大容许差距不得超过表2的规定，平均百分率计算到最近似的整数。 表 2 生活力测定重复间的最大容许差距 平均生活力百分率 重复间容许的最大差距 1 2 4次重复 3次重复 2次重复99 98 97 96 95 9394 9192 90 89 88 87 8486 2 3 4 5 6 78 910 11 12 13 14 1517 5 6 7 8 9 10 11 12 12 13 13 14 5 6 7 8 9 10
19、 11 11 12 12 13 6 6 7 8 9 9 10 10 11 页码，7/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm 在GB/T 3543.1的结果报告单“其他测定项目”栏中要填报“四唑测定有生活力的种子_”。 对豆类、棉籽和蕹菜等需增填“试验中发现的硬实百分率”，硬实百分率应包括在所填报有生活力种子的百分率中。 第二篇 种子健康测定 8 仪器设备 a. 显微镜（60倍双目显微镜）； b. 培养箱； c. 近紫外灯； d. 冷冻冰箱； e. 高压消毒锅、培养皿等。 9 测定程序 9.1 未经培
20、养的检验（不能说明病原菌的生活力） a. 直接检查 适用于较大的病原体或杂质外表有明显症状的病害，如麦角、线虫瘿、虫瘿、黑穗病孢子、螨类等。必要时，可应用双目显微镜对试样进行检查，取出病原体或病粒，称其重量或8183 7880 7677 7375 7172 6970 6768 6466 5663 55 5154 1820 2123 2425 2628 2930 3132 3334 3537 3845 46 4750 15 16 17 17 18 18 18 19 19 20 20 14 15 16 16 16 17 17 17 18 18 18 11 12 13 14 14 14 15 15
21、15 15 16 页码，8/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm计算其粒数。 b. 吸胀种子检查 为使子实体、病症或害虫更容易观察到或促进孢子释放，把试验样品浸入水中或其他液体中，种子吸胀后检查其表面或内部，最好用双目显微镜。 c. 洗涤检查 用于检查附着在种子表面的病菌孢子或颖壳上的病原线虫。 分取样品两份，每份5g，分别倒入100mL三角瓶内，加无菌水10mL，如使病原体洗涤更彻底，可加入0.1润滑剂（如磺化二羧酸酯），置振荡机上振荡，光滑种子振荡5min，粗糙种子振荡10min。将洗涤液移入
22、离心管内，在10001500g离心3 5min。用吸管吸去上清液，留1mL的沉淀部分，稍加振荡。用干净的细玻璃棒将悬浮液分别滴于5片载玻片上。盖上盖玻片，用400500倍的显微镜检查，每片检查10个视野，并计算每视野平均孢子数，据此可计算病菌孢子负荷量，按式（1）计算： d. 剖粒检查 取试样510g（小麦等中粒种子5g，玉米、豌豆大粒种子10g）用刀剖开或切开种子的被害或可疑部分，检查害虫。 e. 染色检查 高锰酸钾染色法：适用于检查隐蔽的米象、谷象。取试样 15g，除去杂质，倒入铜丝网中，于30水中浸泡1min，再移入1高锰酸钾溶液中染色1min。然后用清水洗涤，倒在白色吸水纸上用放大镜检
23、查，挑出粒面上带有直径0.5mm的斑点即为害虫籽粒。计算害虫含量。 碘或碘化钾染色法：适用于检验豌豆象。取试样50g，除去杂质，放入铜丝网中或用纱布包好，浸入1碘化钾或2碘酒溶液中11.5min。取出放入0.5的氢氧化钠溶液中，浸30s，取出用清水洗涤1520s，立即检验，如豆粒表面有12mm直径的圆斑点，即为豆象感染。计算害虫含量。 f. 比重检验法 取试样100g，除去杂质，倒入食盐饱和溶液中（含盐35.9g溶于1000mL水中），搅拌1015min，静止12min，将悬浮在上层的种子取出，结合剖粒检验（见9.1d.），计算害虫含量。 g. 软X射线检验 N=（ n1 n2 n3）/ n4
24、（1）式中： N每克种子的孢子负荷量；n1每视野平均孢子数；n2盖玻片面积上的视野数；n31mL水的滴数；n4供试样品的重量。页码，9/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm 用于检查种子内隐匿的虫害（如蚕豆象、玉米象、麦蛾等），通过照片或直接从荧光屏上观察。 9.2 培养后的检查 试验样品经过一定时间培养后，检查种子内外部和幼苗上是否存在病原菌或其症状。常用的培养基有三类： a. 吸水纸法 吸水纸法适用于许多类型种子的种传真菌病害的检验，尤其是对于许多半知菌，有利于分生孢子的形成和致病真菌在幼苗上
25、的症状的发展。 稻瘟病（ Pyriculana oryzae Cav.） 取试样400粒种子，将培养皿内的吸水纸用水湿润，每个培养皿播25粒种子，在22下用12h黑暗和 12h近紫外光照的交替周期培养7d。在1250倍放大镜下检查每粒种子上的稻瘟病分生孢子。一般这种 真菌会在颖片上产生小而不明显、灰色至绿色的分生孢子，这种分生孢子成束地着生在短而纤细的分生 孢子梗的顶端。 菌丝很少覆盖整粒种子。如有怀疑，可在200倍显微镜下检查分生孢子来核实。典型的 分生孢子是倒梨形，透明，基部钝圆具有短齿，分两隔，通常具有尖锐的顶端，大小为（20 25） m（912） m。 水稻胡麻叶斑病（ Drechsl
26、era oryzae Subram&Jain） 取试样400粒种子，将培养皿里的吸水纸用水湿润，每个培养皿播25粒种子。在22下用12h黑暗和12h近紫外光照的交替周期培养7d。在1250倍放大镜下检查每粒种子上的胡麻叶斑病的分生孢子。在种皮上形成分生孢子梗和淡灰色气生菌丝，有时病菌会蔓延到吸水纸上。如有怀疑，可在200倍显微镜下检查分生孢子来核实。其分生孢子为月牙形，35170） m（1117） m，淡棕色至棕色，中部或近中部最宽，两端渐渐变细变圆。 十字花科的黑胫病（ Leptosphaeria maculans Ces.&de Not.）即甘蓝黑腐 病（ Phoma Lingam Des
27、m.） 取试样1000粒种子，每个培养皿垫入三层滤纸，加入5mL0.2（ m/V）的2，4-二氯苯氧基乙酸钠盐（2，4-D）溶液，以抑制种子发芽。沥去多余的2，4-D溶液，用无菌水洗涤种子后，每个培养皿播50粒种子。在20用12h光照和12h 黑暗交替周期下培 养11d。经6d后，在25倍放大镜下，检查长在种子和培养基上的甘蓝黑腐病松散生长的银白色菌丝和分生孢子器原基。经11d 后，进行第二次检查感染种子及其周围的分生孢子器。记录已长有的甘蓝黑腐病分生孢子器的感染种子。 b. 砂床法 适用于某些病原体的检验。用砂时应去掉砂中杂质并通过1mm孔径的筛子，将砂粒清洗，高温烘干消毒后，放入培养皿内加
28、水湿润，种子排列在砂床内，然后密闭保持高温，培养温度与纸床相同，待幼苗顶到培养皿盖时进行检查（约经710d） 。 c. 琼脂皿法 页码，10/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm 主要用于发育较慢的致病真菌潜伏在种子内部的病原菌，也可用于检验种子外表的病原菌。 小麦颖枯病（ Septoria nodorum Berk.） 先数取试样400粒，经1（ m/m）的次氯酸钠消毒10min后，用无菌水洗涤。在含0.01硫酸链霉素的麦芽或马铃薯左旋糖琼脂的培养基上，每个培养皿播10粒种子于琼脂表面，在20黑
29、暗条件下培养7d。用肉眼检查每粒种子上缓慢长成圆形菌落的情况，该病菌菌丝体为白色或乳白色，通常稠密地覆盖着感染的种子。菌落的背面呈黄色或褐色，并随其生长颜色变深。 豌豆褐斑病（ Ascochyta pisi Lib） 先数取试样400粒，经1（ m/m）的次氯酸钠消毒10min后，用无菌水洗涤。在麦芽或马铃薯葡萄糖琼脂的培养基上，每个培养皿播10粒种子于琼脂表面，在20黑暗条件下培养7d。用肉眼检查每粒种子外部盖满的大量白色菌丝体。对有怀疑的菌落可放在25倍放大镜下观察，根据菌落边缘的波状菌丝来确定。 9.3 其他方法 大麦的散黑穗病菌可用整胚检验。 大麦散黑穗病（ Ustilago nuda
30、 Rostr.） 两次重复，每次重复试验样品为100120g（根据千粒重推算含有20004000粒种子）。先将试验样品放入1L新配制的5（ V/V）NaOH溶液中，在20下保持24h。用温水洗涤，使胚从软化的果皮里分离出来。收集胚在1mm网孔的筛子里，再用网孔较大的筛子收集胚乳和稃壳。将胚放入乳酸苯酚（甘油、苯酚和乳酸各三分之一）和水的等量混合液里，使胚和稃壳能进一步分离。将胚移置盛有75mL清水的烧杯中，并在通风柜里，保持在沸点大约30s，以除去乳酸苯酚，并将其洗净。然后将胚移到新配制的微温甘油中，再放在1625倍放大镜下，配置适当的台下灯光，检查大麦散黑穗病所特有的金褐色菌丝体，每次重复检
31、查1000个胚。 测定样品中是否存在细菌、真菌或病毒等，可用生长植株进行检查，可在供检的样品中取出种子进行播种，或从样品中取得接种体，以供对健康幼苗或植株一部分进行感染试验。应注意植株从其他途径传播感染，并控制各种条件。 10 结果表示与报告 以供检的样品重量中感染种子数的百分率或病原体数目来表示结果。 填报结果要填报病原菌的学名，同时说明所用的测定方法，包括所用的预措方法，并说明用于检查的样品或部分样品的数量。 第三篇 重量测定 11 仪器设备 a. 数粒仪或供发芽试验用的数种设备。 b. 感量为0.1，0.01g的天平。 12 测定程序 页码，11/16GB/T 3543.71995200
32、6-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm12.1 试验样品 将净度分析后的全部净种子均匀混合，分出一部分作为试验样品。 12.2 测定方法 任选下列方法之一进行测定。 a. 百粒法 用手或数种器从试验样品中随机数取8个重复，每个重复100粒，分别称重（g），小数位数与GB/T 3543.3的规定相同。 计算8个重复的平均重量、标准差及变异系数，按式（2）、（3）计算： 如带有稃壳的禾本科种子见GBT 3543.3 附录B（补充件）变异系数不超过6.0，或其他种类种子的变异系数不超过4.0，则可计算测定的结果。如变异系数超过上述限度，则应再测
33、定8个重复，并计算16个重复的标准差。凡与平均数之差超过两倍标准差的重复略去不计。 b. 千粒法 用手或数粒仪从试验样品中随机数取两个重复，大粒种子数500粒，中小粒种子数1000粒，各重复称重（g），小数位数与GBT 3543.3的规定相同。 两份重复的差数与平均数之比不应超过5，若超过应再分析第三份重复，直至达到要求，取差距小的两份计算测定结果。 c. 全量法 将整个试验样品通过数粒仪，记下计数器上所示的种子数。计数后把试验样品称重（g），小数位数与GBT 3543.3的规定相同。 13 结果表示与报告 如果是用全量法测定的，则将整个试验样品重量换算成1000粒种子的重量。 （2）式中：
34、X各重复重量，g；n重复次数。 （3）式中： S标准差；100粒种子的平均重量，g。页码，12/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm 如果是用百粒法测定的，则从8个或8个以上的每个重复100粒的平均重量（ ），再换算成1000粒种子的平均重量（即10 ）。 根据实测千粒重和实测水分，按GB 44044409和GB 80798080种子质量标准规定的种子水分，折算成规定水分的千粒重。计算方法如下： 其结果按测定时所用的小数位数表示（见12章）。 在GB/T 3543.1的种子检验结果报告单“其他测定
35、项目”栏中，填报结果。 第四篇 包衣种子检验 14 仪器设备 a. 发芽仪器（同GB/T 3543.4的规定）。 b. 数种设备（同GB/T 3543.4的规定）。 c. 筛选机。 15 扦样 除下列规定外，其他应符合GB/T 3543.2的规定。 15.1 种子批的大小 如果种子批无异质性，种子批的最大重量可与GB/T 3543.2扦样中所规定的最大重量相同，种子批重量（包括各种丸衣材料或薄膜）不得超过42000kg（即40000kg，再加上5的容许差距）。种子粒数最大为1109粒（即10000个单位，每单位为100000粒种子）。以单位粒数划分种子批大小的，应注明种子批重量。 15.2 送
36、验样品的大小 送验样品不得少于表3和表4所规定的丸粒数或种子粒数。种子带按GB/T 3543.2所规定的方法随机扦取若干包或剪取若干片断。如果成卷的种子带所含 种子达到2106粒，就可组合成一个基本单位（即视为一个容器）。如果样品较少，应在报告上注明。 表 3 丸化与包膜种子的样品大小（粒数） 千粒重（规定水分，g）（实测千粒重（g）1实测水分（）/1规定水分（）（4）项目 送验样品不得少于 试验样品不得少于 净度分析 重量测定 发芽试验 7 500 7 500 7 500 2 500 净丸化种子 400 页码，13/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:Inet
37、pubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm表 4 种子带的样品大小（粒数） 15.3 送验样品的取得 由于包衣种子送验样品所含的种子数比无包衣种子的相同样品要少一些，所以在扦样时必须特别注意所扦的样品能保证代表种子批。在扦样、处理及运输过程中，必须注意避免对包衣材料的脱落，并且必须将样品装在适当容器内寄送。 15.4 试验样品的分取 试验样品不应少于表3和表4所规定的丸化粒数或种子数。如果样品较少，则应在报告上注明。 丸化种子可用GB/T 3543.2所述的分样器进行分样，但种子落下距离决不能超过250mm。 16 净度分析的测定程序 严格地说，丸化种子和种子带内的种子的净度分
38、析并不是规定要做的。如送验者提出要求，可用脱去丸衣的种子或从带中取出种子进行净度分析。 16.1 试验样品 丸化种子的净度分析应按GB/T 3543.2的规定从送验样品中分取试验样品，其大小已在表3和表4中作了规定。净度分析可用该规定丸化粒数的一个试验样品或这一重量一半的两个半试样。试样或半试样称重，以克表示，小数位数达到GB/T 3543.3规定的要求。 16.2 脱去丸化物 可将试样不超过2500粒放入细孔筛里浸在水中振荡，以除去丸化物。所用筛孔建议上层筛用1.00mm，下层筛用0.5mm。丸化物质散布在水中，然后将种子放在滤纸上干燥过夜，再放在干燥箱中干燥。 其他植物种子数目测定 丸化种
39、子 包膜种子 大小分级 10 000 25 000 10 000 7 500 25 000 2 000 项目 送验样品不得少于 试验样品不得少于 种的鉴定 发芽试验 净度分析 其他植物种子数目测定 2 500 2 500 2 500 10 000 100 400 2 500 7 500 页码，14/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm16.3 分离三种成分 称重后按下列规定将丸化种子的试验样品分为三种成分：净丸化种子、未丸化种子及杂质，并分别测定各种成分的重量百分率。 净丸化种子应包括： a. 含
40、有或不含有种子的完整丸化粒； b. 丸化物质面积表面覆盖占种子表面一半以上的破损丸化粒，但明显不是送验者所述的植物种子或不含有种子的除外。 未丸化种子应包括： a. 任何植物种的未丸化种子； b. 可以看出其中含有一粒非送验者所述种的破损丸化种子； c. 可以看出其中含有送验者所述种，而它又未归于净丸化种子中的破损丸化种子。 杂质包括： a. 脱下的丸化物质； b. 明显没有种子的丸化碎块； c. 按GB/T 3543.3规定作为杂质的任何其他物质。 16.4 种的鉴定 尽可能鉴定所有全部其他植物种子所属的种和每种杂质。如需填报，则以测定重量的百分率表示。 为了核实丸化种子中所含种子是确实属于
41、送验者所述的种，必须经净度分析的净丸化部分中或从剥离（或溶化）种子带中取出100颗，除去丸化物质，然后测定每粒种子所属的植物种。丸化物质可冲洗掉或在干燥情况下除去。 16.5 其他植物种子的数目测定 其他植物种子数目测定的试验样品不应少于表3和表4所规定的数量，试验样品应分为两个半试样。按上述方法除去丸化物质，但不一定要干燥。须从半试样中找出所有其他植物种子或按送验者要求找出某个所述种的种子。 16.6 结果计算和表示 应符合GB/T 3543.3的规定。 17 发芽试验的测定程序 发芽试验须用从净度测定后的净丸化种子部分进行，须将净丸化种子充分混合，随机数取400粒丸化种子，每个重复100粒
42、。 页码，15/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm 发芽床、温度、光照条件和特殊处理应采用GB/T 3543.4所规定的方法进行发芽。纸、砂可作为发芽床，有时也可用土壤。建议丸化种子用皱褶纸，尤其是发芽结果不能令人满意时，用纸间的方法可获得满意结果。 有新鲜不发芽种子时，可采用GB/T 3543.4破除生理休眠的方法进行处理。 根据丸化材料和种子种类的不同，供给不同的水分。如果丸化材料粘附在子叶上，可在计数时用水小心喷洗幼苗。 试验时间可能比GB/T 3543.4所规定的时间要长。但发芽缓慢可能
43、表明试验条件不是最适宜的，因此需做一个脱去包衣材料的种子发芽试验作为核对。 正常幼苗与不正常幼苗的鉴定标准仍按GB/T 3543.4的规定进行，一颗丸化种子，如果至少能产生送验者所叙述种的一株正常幼苗，即认为是具有发芽力的。如果不是送验者所叙述的种，即使长成正常幼苗也不能包括在发芽率内。 幼苗的异常情况可能由于丸化物质所引起，当发生怀疑时，用土壤进行重新试验。 复粒种子构造可能在丸化种子中发生，或者在一颗丸化种子中发现一粒以上种子。在这种情况下，应把这些颗粒作为单粒种子试验。试验结果按一个构造或丸化种子至少产生一株正常幼苗的百分率表示。对产生两株或两株以上正常幼苗的丸化种子要分别计数其颗数。
44、结果计算与报告按GB/T 3543.4的规定。 18 丸化种子的重量测定和大小分级 重量测定按第三篇所规定的程序进行。 对甜菜和丸化种子大小分级测定：所需送验样品至少250g，分取两个试样各50g（不少于45g，不大于55g），然后对每个试样进行筛理。其圆孔筛的规格是：筛孔直径比种子大小的规定下限值小0.25mm的筛子一只，在种子大小范围内以相差0.25mm为等分的筛子若干个，比种子大小的规定上限大0.25mm的筛子一只。将筛下的各部分称重，保留两位小数。各部分的重量以占总重量的百分率表示，保留一位小数。两份试样之间的容许差距不得超过1.5，否则再分析一份试样。 页码，16/16GB/T 3543.719952006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbnN3543G0A.htm
