GB T 5521-1989 谷物和谷物产品α-淀粉酶活性的测定 比色法.pdf

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资源描述

1、GB 552189 本标准等效采用国际标准ISO 39831977谷物和谷物产品 -淀粉酶活性的测定 比色法。 1 主题内容和适用范围 本标准规定了用比色法测定谷物和谷物产品 -淀粉酶活性所用仪器、试剂、分析步骤和结果计算。 本标准适用于测定谷物和谷物产品 -淀粉酶活性,也可用于测定源于真菌或细菌的 -淀粉酶干粉的活性。 2 定义 1L溶剂从1g样品中所提取的酶,在规定条件下,每秒钟降解1.02410-5单位的 -极限糊精底物溶液,则该样品的 -淀粉酶活性等于一个单位,极限糊精是被 -淀粉酶完全降解了的淀粉产物。 3 原理 酶降解 -极限糊精底物溶液,经过不同的反应时间,将反应混合物等分加到碘

2、溶液中。随着反应时间的增加而使颜色强度降低,以测定酶活性。 4 试剂 4.1 碘(GB 67877); 4.2 碘化钾(GB 127277); 4.3 冰乙酸(GB 67678); 4.4 硫酸(GB 62578); 4.5 无水乙酸钠(GB 69481); 4.6 氯化钙; 4.7 可溶性淀粉1);注:1)可采用Lintner淀粉或质量相当的国产可溶性淀粉。浙江菱湖化工试剂厂产品符合要求。 4.8 浮石粉; 4.9 碘贮备液: 称取11.0g碘化钾溶于少量水中,加入5.50g结晶碘,搅拌至碘完全溶解。再定容至250mL,置于棕色瓶中,在暗处贮存,此溶液可保存一个月; 4.10 碘稀释液: 页

3、码,1/5GB 5521892006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbrR552100K.htm 称取40.0g碘化钾溶于水中,加4.00mL碘贮备液,并稀释至1L,用时现配,不可过夜; 4.11 缓冲液: 称取164g无水乙酸钠溶于水中,加入120mL冰乙酸用水定容至1L; 4.12 0.2( m/V)氯化钙溶液; 4.13 0.05mol/L硫酸溶液; 4.14 -淀粉酶溶液: 称取10g有酶活性的黄豆粉(粗细度为通过1.5mm孔筛),加入85mL水和 15mL0.05mol/L硫酸充分搅匀,静置15min,抽滤,该滤液用于制备 -极限糊精底物溶液; 4.1

4、5 -极限糊精底物溶液: 称取5.00g(干基)可溶性淀粉于小烧杯中,加入约20mL水混匀,将其边搅拌边缓慢倒入盛有100mL沸水的500mL高型烧杯中,并用洗瓶将小烧杯中的淀粉全部转移至高型烧杯中,继续搅拌并加热,缓慢煮沸2min。加盖表面皿,在自来水中冷却至30以下,加入25mL缓冲溶液及50mL -淀粉酶液,在室温下放置20h,加入1勺浮石粉,将此溶液在10min之内缓慢煮沸,然后继续沸腾5min以上。冷却至30以下,用水定容至250mL,摇匀,过滤。滤液中加几滴甲苯,此溶液的pH值应为4.70.1,在25以下可连续使用五天。 5 仪器 5.1 恒温水浴,300.1; 5.2 恒温水浴,

5、200.1; 5.3 分光光度计或比色计; 5.4 秒表; 5.5 筛子:孔径为1.0mm、1.5mm; 5.6 pH计。 6 分析步骤 6.1 分光光度计及其空白调整: 将分光光度计连接稳压电源,预热20min,调整波长为575nm。将2.0mL氯化钙溶液加到10.0mL稀碘溶液中,然后以适量的水 V0稀释(加水量一般为2040mL, V0详见6.2),混匀后达到20,用1cm比色皿进行测试,调节仪器狭缝宽度,使吸光度为零。 6.2 底物溶液的校准: 分别吸取5.0mL -极限糊精溶液和15.0mL氯化钙溶液于一个100mL烧杯中,混匀取出2.0mL混合液至另一个100mL烧杯中,加入10.

6、0mL稀碘溶液和适量的水,混匀置于20水浴中,用1cm比色皿在波长575nm处,以6.1所用溶液为参比,测其吸光度。调整加水量,使测得的吸光度在0.550.60之间,如果测得吸光度大于0.60则增大加水量,如果测得值少于0.55则减少页码,2/5GB 5521892006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbrR552100K.htm加水量。通过反复试配,直至测定的吸光度值在0.550.60之间,记下此时的加水量 V0,并用它调整空白溶液的加水量 V0即为该 -极限糊精测试时的加水量。 6.3 -淀粉酶的提取: 称取谷物样品约5g(精确到0.05g),倒入300mL

7、锥形瓶中,加入预热到30 的氯化钙溶液1000.5mL,充分摇匀,置于30的恒温水浴中。在15、30、45min 时从水浴中取出,上下颠倒锥形瓶10次,重新置于水浴,共提取60min。取出过滤,滤液即为酶提取液。 6.4 -淀粉酶活性测定: 把酶提取液和 -极限糊精溶液置于30水浴中,10min后用快速移液管吸移5.0mL -极限糊精溶液至盛有15.0mL酶提取液的锥形瓶中,加塞后摇匀。在加液的同时,用秒表计时。吸取10.0mL稀碘溶液于各个50mL容量瓶中,加入 V0mL水, 混匀加塞后置于20水浴中,每隔5min或10min进行下列操作: 6.4.1 吸取2.0mL酶、 -极限糊精混合液到

8、一个盛有稀碘溶液和 V0mL水的容量瓶中,摇匀后置于水浴,使溶液温度达到20。 6.4.2 倒入比色皿测其吸光度。 7 结果计算 7.1 计算公式: -淀粉酶活性由下式求得: 7.2 计算举例: 含14.6水分的样品5.20g,用100mL氯化钙溶液提取。由于酶提取液与极限糊精的反应速度太快,故用氯化钙溶液稀释酶提取液,1份酶提取液加1.5份氯化钙溶液。因此f11.52.5。 极限糊精与酶提取液混合后,间隔5,10和20min后,吸光度分别为: A=(500 f/m)100/(100- h)(lg D1-lgD2)/( t1-t2)=500 f b/m)100/(100- h)式中: A -淀

9、粉酶活性,单位;m100mL氯化钙提取的试样质量,g;h试样中水分含量,;f酶提取液的稀释倍数;t1、 t2不同的反应时间,min;D1、 D2时间 t1、 t2时的吸光度;blg D对 t的曲线的斜率的绝对值;500系数。时间,min 吸光度 D lgD+15 0.498 0.697页码,3/5GB 5521892006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbrR552100K.htm 根据5min和10min后的观察结果: 用三个观察结果作lg D对 t的曲线(见图)。 把 b=0.01391代入公式得: 7.3 结果的重复性: 同一实验室同时或连续两次测定结果之

10、差,不得超过平均值的10,如果两次测定结果符合要求,则取结果的平均值。按下表修约: 10 0.425 0.62820 0.308 0.489b(0.6970.628)/(105)0.0138min1A5002.50.01391/5.20100/(10014.2)3.9单位 页码,4/5GB 5521892006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbrR552100K.htm 活性,单位 修约成整数范围,单位 50 50500 5005000 500050000 0.1 1 10 100 注: 测定过程中应合理调整酶的浓度,使3560的 -极限糊精在1540min内降解,即最后测得的吸光度为底物校准时吸光度的4065。如果吸光度降得太快,则酶液可用0.2的氯化钙溶液再稀释。如酶的活性太低,为获得正确结果,可将反应时间延长到60min以上。在用分光光度计测定吸光度时,溶液的温度对结果有影响,必须控温在20,在6.4的操作中,从显色到测定吸光度的间隔时间一般对结果没有影响,如测定一系列样品,可在所有样品均完成显色后再一起测定吸光度。但最长间隔时间不得超过1h。页码,5/5GB 5521892006-3-29file:/C:InetpubwwwrootdatagbrR552100K.htm

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