1、 ICS 13.310 A 92 中 华 人 民 共 和 国 公 共 安 全 行 业 标 准 GA GA/T 法庭科学 生物 检材 中涕灭威 检验 气相 色谱 -质谱 和 液相色谱 -质谱法 Forensic sciences Examination methods for aldicarb in biological samples GC-MS and LC-MS - -发布 - -实施 中华人民共和国公安部 发布 GA/T I 前 言 本标准按照 GB/T 1.1-2009 给出的规则起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利 。 本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任 本标准由全国刑事
2、技术标准化技术委员会毒物分析 分技术委员会 ( SAC/TC 179/SC 1) 提出并 归口。 本标准起草单位:公安部物证鉴定中心 、 运城市公安局 、 山西医科大学 。 本标准主要起草人: 王瑞花、 栾玉静、 王爱华 、 任昕昕 、 董颖 、杜鸿雁 、 张云峰、 黄健、 刘彦军 , 贠克明、尉志文 。 GA/T 1 法庭科学 生物检材 中 涕灭威 检验 气相色谱 -质谱 和 液相色谱 -质谱 法 1 范 围 本标准规定了 法庭科学 生物 检材 (血、尿、肝、肾 、胃及胃内容 等) 中 涕灭威 的 气相色谱 -质谱( GC-MS) 定性 检验方 法 和 液相色谱 -质谱 ( LC-MS) 定
3、性定量 检验方 法 。 本标准适用于 法庭科学 生物 检材 中 涕灭威 的 定性分析和定量分析 。 其他可疑 样品 中涕灭威的定性分 析 和 定量分析可参照使用。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。 凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GA/T 122 毒物分析名词术语 3 术语和定义 GA/T 122 界定的术语和定义适用于本文件。 4 原理 以空白样品和添加样品作对照,按平行操作的要求, 对 生物 检材进行提取、净化及浓缩 , 采 用
4、气相 色谱 -质谱法定性 , 液相色谱 -质谱法定性定量 ,以保留时间、 质谱特征离子碎片峰 和相对丰度 比 作为定 性判断依据 ;以峰面积为依据, 用外标法进行定量分析。 5 试剂 和 材料 5.1 试剂 气相色谱 -质谱 实验用水应符合 GB/T 6682 中规定的三级水 , 液相色谱 -质谱 实验用水应符合 GB/T 6682 中规 定的 一 级水。除非另有 说明,在分析中使用的试剂均为分析纯, 试剂包括: a) 甲醇 ; b) 5%甲醇溶液: 移取 5mL 甲醇,加水稀释至 100mL; c) 乙腈 (色谱纯) ; d) 乙酸乙酯 ; e) 二氯甲烷 ; f) 甲酸 (色谱纯) ; g
5、) 甲酸铵 (色谱纯) ; h) 2%氨水溶液: 移取 2mL 氨水,加水稀释至 100mL; i) 标准溶液 : 1) 1.0mg/mL 标准 物质 溶液 : 根据涕灭威标准物质的纯度, 称取适量 , 6 用甲醇配制 1.0mg/mL 涕灭威标准物质溶液,置于冰箱中冷藏保存。有效期 6 个月。或采用市售标准溶液; GA/T 2 2) 0.1mg/mL 标准工作溶液:移取 1.0mg/mL 的 涕灭威 标准物质溶液 1.0mL,用甲 醇定容至 10mL,混匀,密封,置于冰箱中冷藏保存 。 有效期 3 个月。实验中所用其 他 浓度的标准 工作溶液均由 0.1mg/mL 标准物质溶液用甲醇稀释得到
6、。 注: 特殊情况下可使用对照溶液代替标准溶液 。 5.2 材料 材料 包括: a) 具盖离心管 ; b) 具塞玻璃试管 ; c) 固相萃取柱: Oasis HLB 固相萃取 柱或等效固相萃取柱 ,使用前 依次用甲醇 、 水活化 ; 注: Oasis HLB 柱是 Waters 公司产品的商品名称,给出这一信息是为了方便本标准的使用者,并不是表示对该产 品的认可。如果其他等效产品具有相同的效果,则可使用这些等效产品 。 d) 一次性注射器 ; e) 有机系微孔滤膜: 0.22m。 6 仪器 和 设备 仪器和设备 包括: a) 气相色谱 -质谱 仪 : 配有电子轰击源( EI); b) 液相色谱
7、 -质谱 仪 : 配有电喷雾离子源( ESI)和三重四极杆质量分析器; c) 电子天平; d) 离心机; e) 振荡器; f) 移液器。 7 操作 方法 7.1 定性分析 7.1.1 样品 提取 7.1.1.1 沉淀蛋白 移取血液等液体检材样品 1.0mL2.0mL或称取铰碎的 肝脏等 固体检材样品 1.0g2.0g于 具盖离心管 中 , 加入乙腈 2.0mL4.0mL,振荡 10min, 8000r/min离心 30min, 取上清液 经 0.22m的 有机 系 微孔滤膜 过滤,供 LC-MS分析。 7.1.1.2 液液萃取 移取血液等液体检材样品 1.0mL2.0mL或称取铰碎的肝脏等固体
8、检材样品 1.0g2.0g于具盖离心管 中 , 加入无水乙醇 100L,乙酸乙酯 /二氯甲烷 (体积比 2:1) 混合溶剂 6mL,振荡 10min, 8000r/min离心 10min,分离有机相, 重复提取一次,合并两次提取的有机相,置于浓缩器上 40浓缩至干,残留物用 甲醇 200L溶解,作为检材样品提取液供 GC-MS分析或用 0.22m的有机系微孔滤膜过滤,供 LC-MS分析。 7.1.1.3 固相萃取 移取血液等液体检材样品 1.0mL 2.0mL,或称取绞碎的肝脏等固体检材样品 1.0g 2.0g于具盖离心 管中,用 4倍体积 2%氨水溶液稀释, 振荡 10min, 8000r/
9、min离心 20min, 取上清液转移至已活化好的固 相萃取柱中,依次 用水 3mL、甲醇 3mL淋洗 , 弃去淋洗液,挤干水分或离心或真空抽固相萃取柱 2min, GA/T 3 用二氯甲烷 3mL洗脱, 收集洗脱液并 置于浓缩器上浓缩至干,残留物用甲醇 200L溶解,作为检材样品 提取液供 GC-MS分析或用 0.22m的有机系微孔滤膜过滤 ,供 LC-MS分析。 7.1.1.4 质控样品制备 取等量相似基质的空白样品(若无相似基质空白样品可用血液替代)两份于具盖离心管中,一份作 为空白样品,一份添加 涕灭威 标准物质,作为添加样品( GC-MS添加样品的浓度为 1.0g/mL(g), LC
10、-MS 添加样品的浓度为 10ng/mL(g)),与检材样品平行操作,得到空白样品提取液和添加样品提取液供仪器 检测。 7.1.2 仪器检测 7.1.2.1 仪器条件 7.1.2.1.1 气相色谱 -质谱条件 以下为参考条件,可根据不同品牌仪器和不同样品等实际情况进行调 整: a) 色谱柱: HP-5柱 ( 30m0.25mm0.25m) 或 等效色谱柱 ; 注: HP-5 柱是 Agilent 公司产品的商品名称,给出这一信息是为了方便本标准的使用者,并不是表示对该产品的认 可。如果其他等效产品具有相同的效果,则可使用这些等效产品。 b) 色谱柱温程: 100 保持 2min,以 40 /m
11、in速率升至 280 ,保持 17.5min; c) 柱流量 : 1mL/min; d) 进样口温度: 280 ; e) 传输线温度: 230 ; f) 离子源 温度: 230 g) 载气:高纯氮; h) 进样方式 : 分流进样 ,分流比 10: 1; i) 扫描方式 : 全扫描( SCAN),质量扫描范围 40amu450amu。 7.1.2.1.2 液相 色谱 -质谱条件 以下为参考条件,可根据不同品牌仪器和不同样品等实际情况进行调整: a) 色谱柱: ACQUITY UPLC HSS T3柱 , (2.1mm 50mm, 1.7m)或 等效 色谱 柱 ; 注: ACQUITY UPLC
12、HSS T3 柱 是 Waters 公司产品的商品名称,给出这一信息是为了方便本标准的使用者,并不是 表示对该产品的认可。如果其他等效产品具有相同的效果,则可使用这些等效产品。 b) 流 动相 : A: 乙腈, B: 5mmol/L甲酸 铵 0.1%甲酸 水溶液 ; c) 洗脱 方式 :梯度洗脱 ,梯度见表 1; 表 1 梯度洗脱条件 时间 min 流速 mL/min A B - 0.5 10% 90% 1.5 0.5 40% 60% 2.0 0.5 40% 60% 2.2 0.5 10% 90% 3.5 0.5 10% 90% d) 柱温: 35 ; e) 流速: 0.5mL/min; f)
13、 离子源:电喷雾 电离源 ( ESI) ; g) 检测方式:正离子; GA/T 4 h) 扫描方式:多反应离子监测 ( MRM) ; i) 雾化气、脱溶剂气:氮气; j) 碰撞气:氩气; k) 离子源温度: 150 ; l) 雾化温度: 350 ; m) 毛细管 电压: 3.0kV; n) MS参考条件 ( 定性、定量离子和锥孔电压、碰撞能量 ) 条件 见表 2。 表 2 MS 参考条件 名 称 定量离子 对 定性离子 对 锥孔电压 V 碰撞能量 eV 涕灭威 208.05 116.0 208.05 116.0 8 16 208.05 88.9 6 7.1.2.2 进样 分别吸取检材、空白和添
14、加样品提取液 及 标准工作溶液,按 7.1.2.1 的 分析条件进样分析。 7.2 定量分析 7.2.1 样品 提取 移取血液等液体检材样品 1.0mL 2.0mL,或称取铰碎的肝脏等固体检材样品 1.0g 2.0g两份,按 7.1.1进行操作。 另取等量相似基质的空白样品三份,其中两份分别添加 涕灭威 标准物质作为添加样品(添加样品中 目标物含量应为检材样品中目标物含量的 (100 50)%),另一份作为空白样品,与检材样品平行操作, 得到空白样品提取液和添加样品提取液供仪器检测。 7.2.2 仪器检测 7.2.2.1 仪器条件 按 7.1.2.1.2 规定的 条件分析。 7.2.2.2 进
15、样 分别吸取检材、空白和添加样品提取液及标准工作溶液,按 7.1.2.1.2的分析条件每个样品进样分析 2 3次。若要报告测量 不确定度,每个样品分析次数应不少于 6次。 7.2.3 计算 7.2.3.1 计算含量 记录各样品提取液平行进样 2 3 次 的 目标物保留时间和峰面积值,按公式( 1)计算含量: 添样添 样添样 VMA VMAW = . (1) 式中: W 检材样品 中目标物的含量,单位为微克每克 ( g/g) 或微克每毫升( g/mL) ; A 样 检材 样品提取液 中目标物峰面积平均值; M 添 添加样品中 目标 物添加量,单位为微克 ( g ) ; GA/T 5 V 样 检材
16、 样品 的定容体积,单位为毫升 ( mL) ; A 添 添加样品 提取液 中目标物峰面积平均值; M 样 检材 样品 的取样量,单位为克 ( g) 或毫升 ( mL) ; V 添 添加样品的定容体积,单位为毫升 ( mL) 。 7.2.3.2 计算相对相差 记录 两 份平行操作的 检材 样品中目标物的 含量,按公式( 2)计算相对相差 : %10021 = X XXRD . (2) 式中: RD相对相差 ,用百分比( %)表示 ; X1、 X2两个 检材 样品平行定量测定的含量数值; X 两个 检材 样品平行定量测定含量的平均值。 8 结果评价 8.1 定性结果评价 8.1.1 气相色谱 -质
17、谱 阳性结果评价:在相同条件下进行样品测定时,检材样品中目标物的色谱峰保留时间与标准溶液一 致(相对误差在 1%之内),且在扣除背景后的检材样品质谱图中,目标物的质谱特征离子(不少于 3 个)与标准溶液一致,特征离子丰度比与浓度接近的标准溶液相比,相对偏差不超过表 3 规定的范围, 空白样品无干扰,则可判断检材样品中检出目标物。 表 3 特征离子丰度比的最大允许相对偏差范围 特征离子丰度比 50% 20 50 10 20 10% 最大允许相对偏差 10 15 20% 50% 阴性结果 评价:检材样品未出现与目标物标准溶液致的色谱峰,且添加样品中出现与目标物标准溶 液一致的色谱峰,空白样品无干扰
18、,则可判断检材样品中未检出目标物。 8.1.2 液相色谱 -质谱 阳性结果评价 : 在相同条件下进行样品测定时,检材样品中目标物的色谱峰保留时间与标准溶液一 致(相对误差在 2.5%之内)、目标物的定性离子(至少两对定性离子)与标准溶液一致,且离子丰度 比与浓度接近的标准溶液相比,相对偏差不超过表 4规定的范围,空白样品无干扰,则可判断检材样品 中检出目标物。 表 4 离子丰度比的最大允许相对偏差范围 离子丰度比 50% 20 50 10 20 10% 最大允许相对偏差 20 25 30% 50% 阴性结果评价:检 材样品未出现与目标物标准溶液 一致的色谱峰,且添加样品中出现与目标物标准 溶液
19、一致的色谱峰,空白样品无干扰,则可判断检材样品中未检出目标物。 8.2 定量结果评价 如果目标物含量的 RD 20%,定量数据可靠,其含量按两份检材的平均值计算。如果检材样品中 目标物含量的 RD 20%,定量数据不可靠。应按 7.2重新提取检验 。 GA/T 6 涕灭威的相关谱图和检出限参见附录 A。 GA/T 7 A 附 录 A (资料性附录) 涕灭威的色谱 -质谱图谱 A.1 涕灭威的相关谱图 A.1.1 涕灭威的气相色谱质谱总离子流图见图 A.1。 图 A.1 涕灭威 GC-MS总离子流图 A.1.2 涕灭威的气相色谱质谱图见图 A.2。 40 50 60 70 80 90 100 1
20、10 120 130 140 150 160 170 180 190 200 0 . 0 2 . 5 5 . 0 7 . 5 ( x 1 , 0 0 0 ) 41 58 86 7655 14469 100 115102 N S O NH O 图 A.2 涕灭威的质谱图 GA/T 8 A.1.3 涕灭威的液相色谱 -质谱图见图 A.3。 50n g ST 10-D ec-201023 : 26: 40 T i m e 0 .2 0 0 .4 0 0 .6 0 0 .8 0 1 .0 0 1 .2 0 1 .4 0 1 .6 0 1 .8 0 2 .0 0 2 .2 0 2 .4 0 2 .6 0
21、 2 .8 0 3 .0 0 3 .2 0 3 .4 0 % 0 0 .2 0 0 .4 0 0 .6 0 0 .8 0 1 .0 0 1 .2 0 1 .4 0 1 .6 0 1 .8 0 2 .0 0 2 .2 0 2 .4 0 2 .6 0 2 .8 0 3 .0 0 3 .2 0 3 .4 0 % 0 0 .2 0 0 .4 0 0 .6 0 0 .8 0 1 .0 0 1 .2 0 1 .4 0 1 .6 0 1 .8 0 2 .0 0 2 .2 0 2 .4 0 2 .6 0 2 .8 0 3 .0 0 3 .2 0 3 .4 0 % 0 20101210T i m ie w ei
22、 S T D - 10 M RM o f 2 Ch a n n e l s ES+ 2 0 8 .0 4 8 1 1 6 .0 0 8 (t i m i e w e i ) 5 .2 0 e 5 1 .9 7 20101210T i m ie w ei S T D - 10 M RM o f 2 Ch a n n e l s ES+ 2 0 8 .0 4 8 8 8 .9 9 5 (t i m i e w e i ) 2 .5 1 e 5 1 .9 8 20101210T i m ie w ei S T D - 10 M RM o f 2 Ch a n n e l s ES+ T IC (t i m i e w e i ) 7 .5 5 e 5 1 .9 7 图 A.3 涕灭威 LC-MS色谱质谱图 A.2 检出限 本方法中 GC-MS的检出限为 500ng/mL( g); LC-MS的检出限为 10ng/mL( g)。 _