1、 ICS 11.020 CCS C 50 DB11 北京市地方标准 DB11/T 14982026 替代 DB11/T 14982017 卫生应急样本采集技术规范 Technical specifications for public health emergency sampling 2026-06-30 发布 2026-10-01 实施 北京市市场监督管理局发 布 DB11/T 14982026 I 目次 前言.II 1 范围.1 2 规范性引用文件.1 3 术语和定义.1 4 基本要求.2 5 技术要求.3 6 采集方法.5 7 样本运送及保存.8 附录 A（规范性）水样本的保存.9 附
2、录 B（资料性）样本采集记录.10 参考文献.11 DB11/T 14982026 II 前言 本文件按照GB/T 1.12020标准化工作导则 第1部分：标准化文件的结构和起草规则的规定起草。本文件代替DB11/T14982017卫生应急样本采集技术规范，与DB11/T14982017相比，除结构性调整和编辑性修改外，主要技术变化如下：删除了范围中职业病危害事故现场样本采集可参照执行；更改了术语和定义中病原微生物、生物样本和环境样本的定义（见 3.1、3.2、3.3，2017 版的 3.1、3.2、3.3）；更改了基本要求中样本选择的内容及表述方法（见 4.2，2017 版的 4.2）；更改
3、了物品准备要求（见 4.3，2017 版的 4.4）；更改了技术要求中生物样本采集种类与要求（见表 1，2017 版的表 1）；更改了技术要求中环境样本采集种类与要求（见表 2，2017 版的表 2）；删除了洗胃液、支气管肺泡灌洗液的采集方法（2017 版的 6.1.6、6.1.11）；更改了采样方法中空气样本采集的表述方法（见 6.2.1，2017 版的表 3）；更改了采样方法中水样本采集的内容及表述方法（见 6.2.2，6.2.3，2017 版的 6.2.2）；删除了人间传染的病原微生物包装名录（2017 版的附录 A）；更改了水样保存的检测项目及保存方法与要求（见表 A.1，2017 版
4、的 C.1）。本文件由北京市卫生健康委提出并归口。本文件由北京市卫生健康委组织实施。本文件起草单位：北京市疾病预防控制中心。本文件主要起草人：钱城、宁芳、王小舫、王东、马宁、李锡太、刘晓峰。本文件及其所替代文件的历次版本发布情况为：2017年首次发布为DB11/T 14982017；本次为第一次修订。DB11/T 14982026 1 卫生应急样本采集技术规范 1 范围 本文件规定了突发公共卫生事件现场样本采集的基本要求、技术要求、采集方法和样本运送及保存。本文件适用于突发公共卫生事件现场样本的采集。2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日
5、期的引用文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB/T 5750.2 生活饮用水标准检验方法 第2部分：水样的采集与保存 GB/T 18204.2 公共场所卫生检验方法 第2部分：化学性指标 GB/T 18204.3 公共场所卫生检验方法 第3部分：空气微生物指标 GB/T 18204.4 公共场所卫生检验方法 第4部分：公共用品用具微生物指标 GB/T 18204.5 公共场所卫生检验方法 第5部分：集中空调通风系统 GB/T 18204.6 公共场所卫生检验方法 第6部分：卫生监测技术规范HJ/T 166 土壤环境监测技术规范
6、 WS/T 225 临床化学检验血液标本的采集与处理 DB11/T 1291 卫生应急一次性防护用品使用规范 DB11/T 1293.2 卫生应急最小工作单元装备技术要求 第2部分：传染病暴发处置类 DB11/T 1293.3 卫生应急最小工作单元装备技术要求 第3部分：化学中毒处置类 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。3.1 病原微生物 pathogenic microorganism 可以侵犯人、动物引起感染甚至传染病的微生物，包括病毒、细菌、真菌、立克次体、寄生虫等。3.2 生物样本 biological specimen 采集的生物个体、组织、排泄物、呕吐物、分泌物。DB11
7、/T 14982026 2 3.3 环境样本 environmental specimen 采集的水、空气、土壤、食品、表面涂抹物。4 基本要求 4.1 采样原则 样本采集应遵循及时性、规范性、科学性、专业性原则。4.2 样本选择 4.2.1 出现咳嗽、咳痰、咽痛等呼吸系统症状时，应采集咽拭子、痰液、血液等生物样本，同时宜采集病例所处环境的空气及物体表面涂抹物等环境样本。4.2.2 出现腹泻、呕吐、腹痛等消化系统症状时，应采集粪便或肛拭子、呕吐物、血液等生物样本，同时根据流行病学调查线索，选择采集水、食品及食品加工过程中的原料、半成品、食品加工工具表面涂抹物、食品从业人员的粪便样本或肛拭子等样
8、本。4.2.3 出现尿频、尿急、尿痛或肾功能损害等泌尿系统症状时，应采集尿液、血液等生物样本。4.2.4 出现剧烈头痛、喷射性呕吐、意识障碍、颈项强直、抽搐等神经系统症状时，应采集血液样本，同时可选择采集可疑食品、水等环境样本。4.2.5 出现皮疹、疱疹、溃疡、局部脓肿等皮肤与软组织临床症状时，应采集皮肤破损处分泌物、血液等生物样本。怀疑传播媒介为啮齿类动物、节肢动物时，可选择采集涉疫动物样本。4.2.6 出现原因不明的发热、寒战等全身性或其他中毒性临床表现，应采集病例的生物样本，及所处环境样本。4.3 物品准备 4.3.1 病原微生物所致突发公共卫生现场样本采集时，除按照 DB11/T 12
9、93.2 中现场处置装备的规定准备外，还应携带微生物气溶胶采样器、液体冲击式微生物气溶胶采样器、六级筛孔撞击式微生物采样器以及装有病毒运输液的采样管、装有卡里-布莱尔运送培养基的采样管、装有营养肉汤的采样管、一次性注射器、无菌采样袋等。4.3.2 化学中毒样本采集装备应按 DB11/T 1293.3 中现场处置装备的规定准备。4.3.3 水样容器按附录 A 规定进行准备。特殊情况下，水容器至少应满足以下要求：a）洁净聚乙烯瓶，总容积不少于 10L；b)洁净磨口硬质玻璃瓶，瓶内按照每升水样 0.01g0.02g 剂量加入抗坏血酸保存剂，总容积不少于 5L；c)无菌洁净磨口硬质玻璃瓶或市售无菌即用
10、型瓶（含有保存剂），总容积不少于 1.5L；d)溶解氧瓶，总容积不少于 0.5L。4.3.4 采样物品应每月检查，且在有效期内使用。其中试剂、培养基还应按照说明书要求保存，或按规定新鲜配制。4.4 样本标识与记录 4.4.1 样本编号应具有唯一性。4.4.2 用于采集和运送、保存样本的容器上，应粘贴清晰、牢固、防水、耐低温的样本编号标签。4.4.3 样本采集记录应单独密封，固定于样本包装或样本容器外表面的显著位置，随样本一同送达DB11/T 14982026 3 实验室。4.4.4 样本采集记录内容及格式见附录 B。4.5 采集人员防护要求 4.5.1 病原微生物所致突发公共卫生事件现场样本采
11、集时，应按 DB11/T 1291 的规定确定防护等级，并使用相应的防护装备。4.5.2 化学中毒现场样本采集时，应按 DB11/T 1293.3 的规定确定防护等级，并使用相应的防护装备。4.5.3 原因不明的现场样本采集时，应按 DB11/T 1291 规定的最高等级选择并使用相应的防护装备。5 技术要求 5.1 生物样本采集应遵循知情同意原则，用于检测微生物指标的样本采集应遵循无菌操作原则，且符合表 1 的规定。表1 生物样本采集种类与要求 序号 采集种类 采集要求 样本量 1.眼拭子 应靠近病灶进行采样，收集分泌物，特别是脓性分泌物。采样后应立即接种在平板上。病例数不足10例，采集全部
12、病例样本；病例数超过10例，至少采集10例。重症病例全部采集；有流行病学关联的病例样本全部采集。2.咽拭子 应采集发病3d以内的病例样本，优先采集新发病例的样本。病例数不足10例，采集全部病例样本；病例数超过10例，至少采集10例。重症病例宜全部采集；有流行病学关联的病例样本全部采集。3.痰液 应采集病例急性期痰液。根据患者痰量采集。4.呕吐物 应采集新鲜呕吐物，置于玻璃、聚乙烯或聚四氟乙烯容器中，不应使用金属容器。每份样本采集50g以上，不足50g全部采集。5.皮肤破损处分泌物 应采集皮损边缘、出血点、皮痂处渗出液及口鼻粘膜出血且被血污染的物品表面样本。每个病例至少采集2支拭子样本。6.血液
13、 应采集发病7d内病例的急性期非抗凝血（血清）样本和乙二胺四乙酸（EDTA）抗凝血样本；还可采集发病28d后的病例非抗凝血（血清）样本。病例数不足10例，采集全部病例样本；病例数超过10例，至少采集10例。有流行病学关联的病例样本全部采集。7.肛拭子 应采集发病3d以内的病例样本，优先采集新发病例的样本；采集时应防止采样棒刺伤病例肠道或肛门；有肛裂及痔疮情况的病例，不应进行肛拭子采集。病例数不足10例，采集全部病例样本；病例数超过10例，至少采集10例。重症病例宜全部采集；有流行病学关联的病例样本全部采集。DB11/T 14982026 4 表1 生物样本采集种类与要求（续）序号 采集种类 采
14、集要求 样本量 8.粪便 应在用药前采集病例新鲜粪便，且宜挑选有脓血、黏液部分。如无粪便排出应进行肛拭子采集。病例数不足10例，采集全部病例样本；病例数超过10例，至少采集10例。重症病例宜全部采集；有流行病学关联的病例样本全部采集。9.尿 应采集中段尿液，并避免其他体液、粪便等杂质混入造成污染。若尿样用于微生物分析，应防止混入抑菌物质；若用于其他类型分析，可将尿液直接收集于洁净的聚乙烯塑料瓶中，同时添加适量酸性保存剂。病例数不足10例，采集全部病例样本；病例数超过10例，至少采集10例。重症病例全部采集；有流行病学关联的病例样本全部采集。10.啮齿类、节肢类动物个体 在事件发生地，应采集多个
15、动物个体样本，并依据不同采集地点，分别保存。在划定的事件调查范围内尽可能多采集样本。5.2 用于检测微生物指标的环境样本应遵循无菌操作原则，且符合表 2 的规定。表2 环境样本采集种类与要求 序号 采集种类 采集要求 采样量 1 固体和半固体食品 采集可能受污染且与事件相关的食品、食品剩余部分、半成品及原料；不均匀的半固体食品及体积较大的固体食品，应从其多个部位分别采集；未打开的定型包装食品整体采集。每件样本采集量不低于200g，不足200g的应全部采集。2 液体食品 采集前应将食品搅动或振荡混匀。每件样本采集量不低于200mL，不足200mL的应全部采集。3 表面涂抹物 样本采集部位应按照G
16、B/T 18204.4的要求执行。对不适宜用规格板采样的物体表面（如门把手，热水瓶把等）可直接采样。使用商品化涂抹采样棒时应按照产品说明书进行操作。除杯具每50cm2采样面积为1份样本外，其他涂抹物为每25cm2采样面积1份样本，每件用品用具采集2份样本。采集量应符合GB/T 18204.6的要求。4 水 生活饮用水、水源水的采集应按照 GB/T 5750.2 的要求执行；集中空调系统冷却水、冷凝水采集应按照GB/T 18204.5的要求执行；游泳池水采集应按照GB/T 18204.6的要求执行。每件水样至少采集1500mL；其他水样采集按附录A要求执行。DB11/T 14982026 5 表
17、2 环境样本采集种类与要求（续）序号 采集种类 采集要求 采样量 5 空气 采样器应设在呼吸带高度。采样点应选择病例或受累人员暴露时间最长的地点。急性化学中毒采样时间不应超过15min。硫化物、二氧化氮、氧化物应避光采集。采气袋采样法采样量应不少于5L；液体吸收法、固体吸附剂法、滤纸和滤膜阻留法的采样量应根据具体有毒物质的采样说明确定。无机含氮化合物、氧化物采集量至吸收液变色即止；公共场所中空气微生物采集量应符合GB/T18204.3 要求，使用六级筛孔撞击式微生物采样器流量为28.3L/min，采集5min15min；选 用 微 生 物 气 溶 胶 采 样 器(采 样 流 量 不 少 于10
18、0L/min）、液体冲击式微生物气溶胶采样器(采样流量7L/min15L/min)；进行采样时，每个测点采样量应不少于2m3；测点数量应符合GB/T 18204.5的要求。6 土壤 应以发生事故的核心区为中心，在污染区域设3个5个采样点，深度0cm20cm，并在距污染中心相对远处采集2个3个对照点。每个采样点采集样本1kg2kg。6 采集方法 6.1 生物样本 6.1.1 咽拭子 咽拭子采集方法如下：a)协助被采样者用 1%淡盐水漱口；b)嘱被采样者仰头张口，发出“啊”音，暴露咽喉；c)取压舌板压舌，用咽拭子擦拭两侧腭弓和双侧咽扁桃体及咽后壁上的分泌物 3 次5 次；d)取出咽拭子放入含有病毒
19、运输液或其他运输液的无菌试管中。6.1.2 肛拭子 肛拭子采集方法如下：a)采样时应站在被采样者侧面，嘱被采样者充分暴露肛门部位；b)采样人员执握肛拭子，凹槽一侧朝前，蘸取生理盐水后，顺肛管方向插入 3cm4cm，凹槽部分全部进入后停止，旋转 360；c)采集后，肛拭子放入运送培养基试管中。6.1.3 眼拭子 取无菌拭子沾取眼分泌物。分泌物较少采样困难时可用刮勺从溃疡下部和边缘刮取，放入无菌试管中。6.1.4 粪便 DB11/T 14982026 6 用采样棒挑取新鲜粪便 10g20g 置入便盒；液状粪便取絮状物、水样便以吸管吸取 10mL20mL，放入无菌密封且不吸水的有盖容器内。6.1.5
20、 呕吐物 直接收集新鲜呕吐物不少于 50g，置于无菌密封非金属容器。若呕吐物不足 50g，则全部采集。6.1.6 血液 应按照 WS/T 225 的规定采集病例静脉血，且每个采样管不少于 5mL。6.1.7 尿液 告知被采样者，留取中段尿且不少于 200mL，并将尿液分装至 2 个容器中。6.1.8 皮肤破损处分泌物 皮肤破损处分泌物采集方法如下：a)先用 75%医用酒精对疱疹周围皮肤进行消毒；b)对皮损边缘、出血点及皮痂部位，用无菌拭子刮取病灶破损部位的脓血液或渗出液；c)对无破损部位脓疱或水泡，待消毒酒精挥发后，挑破疱疹，用无菌拭子蘸取；d)对陈旧脓疱，去除损伤表皮，用无菌拭子擦拭基底；e
21、)采集后，将拭子放入内装 3mL5mL 保存液的采样管内旋盖密封。6.1.9 痰液 6.1.9.1 自然咳痰法：嘱被采样者用清水或冷开水反复漱口，用力深咳，将痰液直接吐入无菌采集容器中。6.1.9.2 诱导咳痰法：痰量少、无痰或咳痰困难者可雾化吸入。于超声雾化器雾化杯中加入 4的氯化钠溶液 40mL，吸入高渗盐溶液，15min25min 后嘱被采样者漱口，用力咳出深部痰，收集入无菌采集容器中。6.1.9.3 支气管镜采集法：在有痰和病变部位用导管吸引直接取得样本，置于无菌采集容器中。6.1.9.4 小儿取痰法：将无菌拭子伸入咽部，使用弯压舌板向后压舌，取小儿咳嗽喷出的分泌物。采集后的拭子放入无
22、菌采集容器内送检。还可通过用手指轻轻叩击胸骨柄上方的方式，诱发咳痰反应，将咳出的痰液收集至无菌采集容器内。6.1.10 啮齿类、节肢类动物个体 6.1.10.1 节肢类动物个体可采用灯光诱捕、利用气味吸引，或使用昆虫网捕捉等方式进行捕捉，捕获后将节肢动物放入小广口瓶中盖好瓶盖。6.1.10.2 已死亡的啮齿类动物个体应单独收集到灭菌密封袋内；捕捉活体时，应提前设置好诱捕装置，捕获后应对捕获个体逐一检查，处死后分别单独收集到灭菌密封袋内。6.2 环境样本 6.2.1 空气 6.2.1.1 采气袋采样法：按照 GB/T 18204.2 的规定采集挥发性强、吸附性小的气态和蒸汽态物质，如一氧化碳、二
23、氧化碳等。6.2.1.2 液体吸收法：选择相应吸收液，按照 GB/T 18204.2 的规定采集气态和蒸汽态物质，如氨、甲醛、臭氧、硫化氢、二氧化硫、二氧化氮、氯气等。DB11/T 14982026 7 6.2.1.3 固体吸附剂法：选择相应固体填充物，按照 GB/T 18204.2 的规定采集气态和蒸汽态物质，如苯、甲苯、二甲苯、总挥发性有机物等。6.2.1.4 滤纸和滤膜阻留法：用于不易或不能被液体吸收的尘粒状气溶胶，如金属等。对滤膜进行干燥称重，装好滤膜或滤膜采样夹，以 5L/min 流量，采集 15min。采集金属烟尘宜选微孔滤膜，采集有机化合物气溶胶宜选玻璃纤维滤膜，采集粉尘宜选过氯
24、乙烯滤膜。6.2.1.5 撞击法和过滤法：用于公共场所中空气和集中空调通风系统中微生物指标的测定。公共场所中空气微生物的采集使用六级筛孔撞击式微生物采样器,根据微生物种类不同采用不同培养基，以28.3L/min 流量，采集 5min15min；公共场所集中空调通风系统中微生物的采集采用气溶胶采样器(采样流量不少于 100L/min)和液体冲击式微生物气溶胶采样器(采样流量 7L/min15L/min)。采样器使用应按照说明书要求进行。吸收液的选择可针对不同微生物指标根据说明书的使用范围选择，用于微生物培养检测的吸收液中不应含有影响微生物生长的成分。6.2.1.6 按照 GB/T 18204.3
25、 和 GB/T 18204.5 的规定设置采样点的位置和数量。6.2.2 生活饮用水、水源水 生活饮用水、水源水的采集方法如下：a)设置采样点应避开通风口及空气污染较严重的地点；b)水样采集与保存应按照 GB/T 5750.2 的规定操作；c)进行无菌采集时，不应用水样荡洗已灭菌的采样瓶或采样袋。6.2.3 集中式空调系统冷凝水、冷却水和游泳池水 集中空调系统冷凝水、冷却水和游泳池水采集方法如下：a)按每升水样 0.8mg 硫代硫酸钠的剂量放入无菌采样瓶；b)集中式空调系统冷却水、冷凝水按照 GB/T 18204.5 的规定采集，冷凝水采样点设置在排水管或冷凝水盘处；冷却水采样点设置在距塔壁
26、20cm、液面下 10cm 处；c)游泳池水采集按照 GB/T 18204.6 的规定执行，采样点设置应避开进水口、排水口及消毒剂投加口；d)进行无菌采集时，不应用水样荡洗已灭菌的采样瓶或采样袋。6.2.4 土壤 应按照 HJ/T 166 的规定操作。6.2.5 食品 食品采样方法如下：a)采用 75%的酒精棉球进行手部消毒；b)点燃酒精灯，置于预采集食品边；c)采集固体或半固体食品样本时，应选用灭菌镊子或灭菌勺；d)采集液体食品样本时，应选用无菌吸管；e)无剩余食品时，采集可疑中毒食品的包装或用灭菌生理盐水洗涤可疑中毒食品的容器，采集容器洗涤液；f)采集后，将样本置入灭菌瓶或灭菌封口袋内，并
27、熄灭酒精灯。6.2.6 表面涂抹物 表面涂抹物采集方法如下：DB11/T 14982026 8 a)杯具表面涂抹物采集应用无菌拭子在杯具内外缘与口唇接触 1cm2cm 高处涂抹 1 圈，每份样本涂抹面积 50cm2，共 2 份，并记录；b)其他表面涂抹物采集应用生理盐水或磷酸盐缓冲液浸湿无菌拭子，由上到下、由左到右擦拭被采样物体的表面，每份样本涂抹面积 25cm2，共 2 份，并记录；c)涂抹完成后，将拭子置于盛有生理盐水或磷酸盐缓冲液的试管中，将拭子手持部位折断丢弃，用酒精灯灼烧灭菌试管口后加盖。7 样本运送及保存 7.1 生物样本 7.1.1 应采取无菌包装，置于密闭盒内填充固定，低温保存
28、并于 24h 内运送至实验室。7.1.2 不能及时分离培养时，应符合以下要求：a)用于细菌培养的样本应采用 28保存；b)用于病毒培养或核酸检测的样本,应在-20以下冷冻保存 7d14d；需长期保存的样本应在-80冷冻保存；c)用于检测抗体的血清样本，超过 24h 的，应采用 28保存，并于 7d 内送检；超过 7d应在-20下冷冻保存；d)用于检测抗原或抗体的其他样本，超过 24h 的，应在-20下冷冻保存。7.2 环境样本 7.2.1 食品样本运送及保存应符合以下要求：a)非冷冻食品应冷藏保存，宜 3h 内送检；b)用于微生物检测的食品样本应 28冷藏保存待检；c)冷冻食品应保持冷冻状态运
29、送至实验室；d)疑似弧菌属（霍乱弧菌、副溶血性弧菌等）、寄生虫感染的样本应常温运送保存。7.2.2 空气微生物样本采集后的平板或吸收液宜 4避光保存，并于 4h 内送检，或按照空气采样器说明书要求送检。7.2.3 水样本应按附录 B 的规定保存。7.2.4 集中式空调系统冷却水、冷凝水样本不应冷冻，运输时应避光防止受热。7.2.5 土壤样本应按 HJ/T 166 规定运送及保存。DB11/T 14982026 9 AA附录A （规范性）水样本的保存 水样本应按表A.1 规定进行保存。表A.1 水样本的保存 序号 采样容器 检测项目 保存方法与要求 1 洁净磨口硬质玻璃瓶或聚乙烯瓶 溴化物 04
30、避光保存，保存不超过14h。浑浊度与色度 04避光保存，保存不超过 14h，采样体积 3L5L。氨（以N计）每升水样中加入0.8mL浓硫酸，04避光保存，保存不超过24h，采样体积不少于0.5L。亚硝酸盐（以N计）04避光保存。硝酸盐（以N计）04避光保存，保存不超过48h。铬（六价）采样瓶内壁无磨损，加入氢氧化钠，将pH调至79，保存不超过48h。2 洁净磨口硬质玻璃瓶 高锰酸盐指数（以O2计）每升水样中加入0.8mL浓硫酸，04冷藏，保存不超过24h，采样体积不少于0.5L。挥发性有机物 加入盐酸（1+1）使pH2，水样应充满容器至溢流并密封，04避光保存；对于含余氯等消毒剂的水样，每升水
31、样加入0.01g0.02g抗坏血酸，保存不超过12h，采样体积不少于0.2L。硫化物 每0.5L水样中加入1mL乙酸锌溶液（220g/L），混匀后再加入1mL氢氧化钠溶液（40g/L）避光保存，保存不超过7d。甲醛、乙醛，丙烯醛 每升水样中加入1mL浓硫酸，04避光保存，保存不超过24h。农药类 瓶盖内衬聚四氟乙烯，04避光保存；对于含余氯等消毒剂的水样，每升水样加 0.01g0.02g 抗坏血酸，保存不超过 24h，采样体积不少于 2.5L。氰化物与挥发酚类 加入氢氧化钠使 pH12，04避光保存；对于含余氯等消毒剂的水样，现场加入适量抗坏血酸，保存不超过 24h，采样体积不少于 1L。3
32、洁净聚乙烯塑瓶 砷 加硝酸使pH2；采用氢化物发生技术分析时，加入盐酸，使pH2，保存不超过14d，采样体积不少于0.2L。氟化物 04避光保存，保存不超过14d。一般金属和类金属 加硝酸使pH2，保存不超过14d，采样体积0.5L 1L。A 4 玻璃广口瓶 石油类 加入盐酸使pH2，保存不超过7d。5 无菌洁净磨口硬质玻璃瓶或市售无菌即用型中含有保存剂 微生物 对于含余氯等消毒剂的水样，每升水样中加入0.8mg硫代硫酸钠；04避光保存，保存不超过8h，采样体积不少于1.5L。6 溶解氧瓶 生化需氧量 04避光保存，保存不超过6h。DB11/T 14982026 10 附录B （资料性）样本采
33、集记录 B.1 生物样本采集记录见表B.1。表 B.1 卫生应急现场生物样本采集记录 样本名称 样本编号 事件名称 被采样人姓名 年龄 性别 单位 采样地点 采样日期 采样时间 主要症状 临床初步印象 样本数量 是否服药 备注 拟检项目 采样人签字 被采样人签字 联系电话 B.2 环境样本采集记录见表B.2。表 B.2 卫生应急现场环境样本采集记录 样本名称 样本编号 事件名称 采样地点 采样日期 采样时间 样本规格数量 样本状态（固体、液、气）气温 气压 采样仪器编号 样本属性（食品样本注明商标、产地、批号；空气样本注明收集仪器型号及编号、采样流量）拟检项目 采样人签字 现场联系人 现场联系电话 DB11/T 14982026 11 参 考 文 献 1 GBZ 159 工作场所空气中有毒物质监测的采样规范 2 WS/T 679 突发中毒事件卫生应急处置技术规范 总则 3 WS/T 680 突发中毒事件卫生应急处置人员防护 导则
